| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 英文缩略表 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-44页 |
| 1 水稻株高的遗传学研究 | 第14-16页 |
| 1.1 水稻矮化突变体的类型 | 第14-15页 |
| 1.2 水稻矮化突变体的来源 | 第15-16页 |
| 1.3 水稻矮化基因的分类及遗传分析 | 第16页 |
| 2 水稻株高的调控 | 第16-18页 |
| 2.1 水稻株高的调控因子 | 第16-17页 |
| 2.2 植物激素对水稻茎伸长的调控作用 | 第17页 |
| 2.3 赤霉素及油菜素内酯(Brassinosteroid,BR)对水稻茎伸长的调控作用 | 第17-18页 |
| 3 油菜素内酯研究进展 | 第18-43页 |
| 3.1 油菜素内酯的结构及分布 | 第18-19页 |
| 3.2 油菜素内酯突变体的表型 | 第19-20页 |
| 3.3 油菜素内酯合成基因研究进展 | 第20-24页 |
| 3.4 油菜素内酯合成途径研究进展 | 第24-28页 |
| 3.5 油菜素内酯信号转导研究进展 | 第28-38页 |
| 3.6 油菜素内酯的功能机制 | 第38-43页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第43-44页 |
| 第二章 csdd1突变体表型及组织细胞形态分析 | 第44-52页 |
| 摘要 | 第44页 |
| 1 材料与方法 | 第44-46页 |
| 1.1 材料及种植 | 第44页 |
| 1.2 节间光学显微镜观察 | 第44-45页 |
| 1.3 叶片透射电镜分析 | 第45页 |
| 1.4 叶片色素含量的测定 | 第45-46页 |
| 2 结果与分析 | 第46-50页 |
| 2.1 csdd1突变体表型分析 | 第46-47页 |
| 2.2 csdd1突变体节间及叶片细胞形态观察 | 第47-49页 |
| 2.3 csdd1突变体叶片的色素含量及透射电镜分析 | 第49-50页 |
| 3 小结 | 第50-52页 |
| 第三章 csdd1的精细定位及其候选基因分析 | 第52-74页 |
| 摘要 | 第52页 |
| 1 材料与方法 | 第52-58页 |
| 1.1 材料及种植 | 第52-53页 |
| 1.2 DNA样品备制及检测 | 第53页 |
| 1.3 SSR和InDel标记的开发 | 第53-54页 |
| 1.4 标记分析 | 第54-55页 |
| 1.5 csdd1位点的定位 | 第55页 |
| 1.6 csdd1突变位点的鉴定 | 第55-56页 |
| 1.7 csdd1缺失片段上的基因预测及表达分析 | 第56页 |
| 1.8 T-DNA标签与d2-3及d2-4突变体表型的共分离验证 | 第56-57页 |
| 1.9 水稻幼苗的暗形态建成 | 第57页 |
| 1.10 水稻幼苗的油菜素内酯处理实验 | 第57-58页 |
| 2 结果与分析 | 第58-71页 |
| 2.1 csdd1的遗传分析 | 第58页 |
| 2.2 csdd1的初步定位 | 第58页 |
| 2.3 csdd1的精细定位 | 第58-60页 |
| 2.4 csdd1突变位点的鉴定 | 第60页 |
| 2.5 csdd1缺失片段上的基因预测 | 第60-61页 |
| 2.6 csdd1缺失片段上的基因表达分析 | 第61-63页 |
| 2.7 csdd1候选基因的功能预测 | 第63页 |
| 2.8 csdd1及d2突变体的表型比较 | 第63-65页 |
| 2.9 csdd1及d2突变体的农艺性状统计分析 | 第65-66页 |
| 2.10 d2-3和d2-4 T-DNA突变体节间细胞学观察 | 第66页 |
| 2.11 d2-3及d2-4的T-DNA标签与突变表型的共分离验证 | 第66-67页 |
| 2.12 D2基因结构及其在csdd1、d2-3及d2-4突变体中的表达分析 | 第67-69页 |
| 2.13 csdd1、d2-3及d2-4突变体的暗形态建成 | 第69-70页 |
| 2.14 csdd1突变体的外源油菜素内酯互补实验 | 第70-71页 |
| 3 小结 | 第71-74页 |
| 第四章 D2基因转基因验证及功能分析 | 第74-98页 |
| 摘要 | 第74页 |
| 1 材料与方法 | 第74-81页 |
| 1.1 受体材料 | 第74-75页 |
| 1.2 试剂、质粒和菌株 | 第75页 |
| 1.3 植物转化载体的构建 | 第75-79页 |
| 1.4 基因的遗传转化 | 第79-80页 |
| 1.5 转基因植株PCR鉴定 | 第80页 |
| 1.6 D2基因与其它BR合成酶基因的同源性分析 | 第80页 |
| 1.7 基因表达分析 | 第80-81页 |
| 2 结果与分析 | 第81-96页 |
| 2.1 D2基因与其它BR合成酶基因的同源性分析 | 第81-82页 |
| 2.2 D2基因的表达分析 | 第82-84页 |
| 2.3 D2基因的互补验证及过表达分析 | 第84-86页 |
| 2.4 csdd1缺失区间内其它候选基因的互补验证及过表达分析 | 第86页 |
| 2.5 D2基因的RNA干扰分析 | 第86-89页 |
| 2.6 D2基因在d2-3突变体中的过表达分析 | 第89-90页 |
| 2.7 csdd1、d2-3及d2-4突变体中的BR相关基因表达分析 | 第90-91页 |
| 2.8 csdd1突变体在T65及9311背景中的表型 | 第91-93页 |
| 2.9 csdd1与d2-1突变体的等位性测验 | 第93页 |
| 2.10 d2-1突变体中D2基因的RNA干扰分析 | 第93-96页 |
| 3 小结 | 第96-98页 |
| 第五章 全文结论与讨论 | 第98-106页 |
| 1 结论 | 第98-100页 |
| 1.1 csdd1、d2-3及d2-4是节间不伸长的极端矮化突变体 | 第98-99页 |
| 1.2 csdd1是一个染色体片段缺失突变体 | 第99页 |
| 1.3 BR合成酶基因CYP90D2/D2完全缺失功能导致了csdd1、d2-3及d2-4突变体的极端矮化表型 | 第99页 |
| 1.4 D2基因的组织特异性表达与其功能相符合 | 第99-100页 |
| 1.5 D2基因的表达受光及BR负反馈机制的调控 | 第100页 |
| 2 讨论 | 第100-103页 |
| 2.1 d2突变体出现两种矮化表型的可能原因 | 第100-101页 |
| 2.2 BR对植物细胞的分裂及伸长具有重要的调控作用 | 第101-102页 |
| 2.3 BR对植物微管组织的发育具有重要的调控作用 | 第102-103页 |
| 3 本研究的创新之处 | 第103-106页 |
| 附录 | 第106-112页 |
| 参考文献 | 第112-124页 |
| 在读期间发表和投稿的论文及申请的专利 | 第124-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
