| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 研究现状、成果 | 第13-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-16页 |
| 一、重组多肽CS5931的原核表达及纯化 | 第16-28页 |
| 1.1 对象和方法 | 第16-24页 |
| 1.1.1 实验菌株 | 第16页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第16-17页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第17页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第17-24页 |
| 1.2 结果 | 第24-26页 |
| 1.2.1 重组多肽CS5931的纯化 | 第24页 |
| 1.2.2 重组多肽CS5931的诱导表达结果及验证 | 第24-26页 |
| 1.3 讨论 | 第26-27页 |
| 1.4 小结 | 第27-28页 |
| 二、重组多肽CS5931的发酵培养基及培养条件的优化 | 第28-45页 |
| 2.1 对象和方法 | 第28-30页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第28页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第28页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第28页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.2 结果 | 第30-43页 |
| 2.2.1 单因素实验筛选结果 | 第30-37页 |
| 2.2.2 Plackett Burman实验结果 | 第37-38页 |
| 2.2.3 响应面试验结果及分析 | 第38-42页 |
| 2.2.4 响应面结果预测评价 | 第42页 |
| 2.2.5 培养条件的优化 | 第42-43页 |
| 2.3 讨论 | 第43-44页 |
| 2.4 小结 | 第44-45页 |
| 三、重组多肽CS5931复性条件的优化及体外抗肿瘤活性评价 | 第45-54页 |
| 3.1 对象和方法 | 第45-49页 |
| 3.1.1 实验菌株 | 第45页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第45页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第45-46页 |
| 3.1.4 实验方法 | 第46-49页 |
| 3.2 结果 | 第49-52页 |
| 3.2.1 人结肠癌细胞HCT116的生长特点 | 第49页 |
| 3.2.2 不同复性条件对重组多肽CS5931抗人结肠癌活性的影响 | 第49-51页 |
| 3.2.3 复性条件的验证 | 第51-52页 |
| 3.2.4 MTT法检测重组多肽CS5931和重组多肽CS5931-EK的活性 | 第52页 |
| 3.3 讨论 | 第52-53页 |
| 3.4 小结 | 第53-54页 |
| 四、重组多肽CS5931的体内抗肿瘤活性评价 | 第54-57页 |
| 4.1 对象和方法 | 第54页 |
| 4.1.1 实验对象 | 第54页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第54页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第54页 |
| 4.1.4 实验方法 | 第54页 |
| 4.2 结果 | 第54-56页 |
| 4.2.1 重组多肽CS5931对人结肠癌HCT116裸鼠移植瘤的生长抑制作用结果 | 第54-56页 |
| 4.3 讨论 | 第56页 |
| 4.4 小结 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-60页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第60-61页 |
| 综述 多肽类抗肿瘤药物的研究进展 | 第61-76页 |
| 综述参考文献 | 第69-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 个人简历 | 第77页 |
