| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-19页 |
| 研究现状、成果 | 第12-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-19页 |
| 一、14-DS-1 胞外寡糖对巨噬细胞的影响 | 第19-34页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-23页 |
| 1.1.1 实验材料 .. | 第19页 |
| 1.1.2 形态学改变观察 .. | 第19-20页 |
| 1.1.3 使用荧光实时定量PCR检测TNF-α 在mRNA水平的表达变化 | 第20页 |
| 1.1.4 Griess反应（监测NO分泌量） | 第20-21页 |
| 1.1.5 吞噬能力测定 | 第21页 |
| 1.1.6 transwell实验 | 第21-22页 |
| 1.1.7 对通过荧光染色对微丝形态进行观察 | 第22-23页 |
| 1.1.8 细胞粘附实验 | 第23页 |
| 1.2 结果 | 第23-32页 |
| 1.2.1 14-DS-1 胞外寡糖的处理可以使小鼠巨噬细胞系RAW264.7 发生形态学改变 | 第23-24页 |
| 1.2.2 本胞外寡糖可增加巨噬细胞系TNF-α 在mRNA水平上的表达 | 第24-26页 |
| 1.2.3 胞外寡糖会使NO的释放量升高 | 第26页 |
| 1.2.4 吞噬能力不受寡糖影响 | 第26-27页 |
| 1.2.5 RAW264.7 细胞在胞外寡糖影响下在transwell实验中迁移能力增强 | 第27-30页 |
| 1.2.6 微丝形态在高浓度胞外寡糖影响下呈现放射的纤维状结构 | 第30-32页 |
| 1.2.7 细胞粘附不受寡糖影响 | 第32页 |
| 1.3 讨论 | 第32-33页 |
| 1.4 小结 | 第33-34页 |
| 二、14-DS-1 胞外寡糖对血管新生的影响 | 第34-43页 |
| 2.1 对象和方法 | 第34-36页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第34页 |
| 2.1.2 体外成管实验 | 第34页 |
| 2.1.3 划痕愈合实验 | 第34-35页 |
| 2.1.4 微管形态实验 | 第35页 |
| 2.1.5 纺锤体形态与定位观察 | 第35-36页 |
| 2.1.6 流式细胞分析 | 第36页 |
| 2.2 结果 | 第36-42页 |
| 2.2.1 14-DS-1 胞外寡糖的处理减弱HUVEC体外成管能力 | 第36-37页 |
| 2.2.2 胞外寡糖微弱减弱HUVEC迁移能力 | 第37-38页 |
| 2.2.3 胞外寡糖对微管形态无明显影响 | 第38-39页 |
| 2.2.4 胞外寡糖影响纺锤体定向和定位的精确进行 | 第39-40页 |
| 2.2.5 胞外寡糖使细胞停滞于S期，并增加凋亡率 | 第40-42页 |
| 2.3 讨论 | 第42页 |
| 2.4 小结 | 第42-43页 |
| 结论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第50-51页 |
| 附录 | 第51-52页 |
| 综述 驱动蛋白5的相关机制和调控 | 第52-70页 |
| 综述参考文献 | 第63-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 个人简历 | 第71页 |
