| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 引言 | 第11-23页 |
| 1 翘嘴鲌 | 第11页 |
| 1.1 翘嘴鲌的资源状况 | 第11页 |
| 2 人工诱导雌核发育 | 第11-19页 |
| 2.1 人工诱导雌核发育的原理 | 第12页 |
| 2.2 人工诱导雌核发育研究方法 | 第12-14页 |
| 2.3 人工雌核发育诱导条件的探究 | 第14-17页 |
| 2.4 人工诱导雌核发育的鉴别 | 第17页 |
| 2.5 人工诱导雌核发育的应用 | 第17-18页 |
| 2.6 人工诱导雌核发育存在问题及展望 | 第18-19页 |
| 3 微卫星标记在鱼类育种中的应用 | 第19-22页 |
| 3.1 微卫星标记的原理 | 第19页 |
| 3.2 微卫星多态性原理 | 第19-20页 |
| 3.3 微卫星标记的特点 | 第20-21页 |
| 3.4 微卫星标记在鱼类遗传纯度分析的应用 | 第21页 |
| 3.5 微卫星标记在鱼类亲子鉴定中的应用 | 第21-22页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 第二章 优化人工诱导翘嘴鲌雌核发育 | 第23-42页 |
| 1 材料和方法 | 第23-28页 |
| 1.1 试验鱼 | 第23页 |
| 1.2 设备和材料 | 第23页 |
| 1.3 方法 | 第23-26页 |
| 1.4 试验设计 | 第26-28页 |
| 1.5 数据分析 | 第28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-39页 |
| 2.1 二次回归模型的建立 | 第28-30页 |
| 2.2 单因素效应分析 | 第30-32页 |
| 2.3 因子互作效应分析 | 第32-36页 |
| 2.4 模型的优化及验证 | 第36-38页 |
| 2.5 因素重要性分析 | 第38-39页 |
| 3 讨论及结论 | 第39-42页 |
| 3.1 冷休克最佳诱导条件 | 第39页 |
| 3.2 冷休克参数讨论 | 第39-40页 |
| 3.3 雌核发育技术的探讨 | 第40-42页 |
| 第三章 雌核发育翘嘴鲌的微卫星遗传纯度分析 | 第42-67页 |
| 1 材料 | 第42-43页 |
| 1.1 材料来源 | 第42页 |
| 1.2 实验设备和试剂 | 第42-43页 |
| 1.3 精卵的采集和精子的失活方法 | 第43页 |
| 2 实验方法 | 第43-57页 |
| 2.1 取样 | 第43页 |
| 2.2 基因组DNA提取 | 第43-45页 |
| 2.3 翘嘴鲌微卫星引物筛选 | 第45-51页 |
| 2.4 微卫星引物的选择及荧光引物合成 | 第51-56页 |
| 2.5 数据统计 | 第56-57页 |
| 3 结果与分析 | 第57-63页 |
| 3.1 微卫星引物筛选汇总 | 第57页 |
| 3.2 微卫星标记电泳检测结果 | 第57-58页 |
| 3.3 微卫星标记分析结果 | 第58-61页 |
| 3.4 四个群体的遗传分化 | 第61-62页 |
| 3.5 不同位点的重组率和近交系数 | 第62-63页 |
| 4 讨论 | 第63-67页 |
| 4.1 微卫星标记鉴定雌核发育 | 第63-64页 |
| 4.2 连续三代雌核发育效果分析 | 第64-67页 |
| 第四章 翘嘴鲌混合育种群的亲子鉴定 | 第67-75页 |
| 1 材料与方法 | 第67-69页 |
| 1.1 实验来源 | 第67页 |
| 1.2 实验设备和试剂 | 第67页 |
| 1.3 微卫星引物的选择及来源 | 第67页 |
| 1.4 微卫星引物PCR扩增与检测 | 第67页 |
| 1.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第67-68页 |
| 1.6 统计分析 | 第68-69页 |
| 2 结果 | 第69-72页 |
| 2.1 20个微卫星标记在翘嘴鲌雌核发育家系的遗传分析 | 第69-70页 |
| 2.2 不同翘嘴鲌混合家系与微卫星数目的关系 | 第70-72页 |
| 2.3 亲缘关系验证 | 第72页 |
| 3 讨论 | 第72-75页 |
| 结论 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-83页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |