| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-23页 |
| 1.1 桔梗的研究进展 | 第15-19页 |
| 1.1.1 植物学特征 | 第15页 |
| 1.1.2 生药学鉴别特征 | 第15-16页 |
| 1.1.3 理化鉴别 | 第16页 |
| 1.1.4 化学成分 | 第16-18页 |
| 1.1.5 药理研究 | 第18-19页 |
| 1.2 多糖的研究进展 | 第19-23页 |
| 1.2.1 多糖概况 | 第19页 |
| 1.2.2 多糖的组成 | 第19-20页 |
| 1.2.3 多糖的生物活性 | 第20-21页 |
| 1.2.4 多糖的研究 | 第21页 |
| 1.2.5 硒多糖的研究进展 | 第21-23页 |
| 第2章 超临界CO2萃取辅助超声提取桔梗多糖的工艺研究 | 第23-31页 |
| 2.1 材料、试剂和仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.1 材料 | 第23页 |
| 2.1.2 试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 仪器 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.2.1 桔梗多糖的提取方法 | 第24-25页 |
| 2.2.2 桔梗多糖中多糖的含量测定 | 第25页 |
| 2.2.3 单因素实验 | 第25页 |
| 2.2.4 超临界CO2辅助提取正交设计 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-30页 |
| 2.3.1 葡萄糖的标准曲线 | 第26页 |
| 2.3.2 单因素的实验结果 | 第26-28页 |
| 2.3.3 正交实验 | 第28页 |
| 2.3.4 超临界CO2萃取工艺的优化 | 第28-30页 |
| 2.3.5 工艺验证实验 | 第30页 |
| 2.4 结论 | 第30-31页 |
| 第3章 桔梗多糖的分离与纯化 | 第31-37页 |
| 3.1 材料、试剂和仪器 | 第31-32页 |
| 3.1.1 材料 | 第31页 |
| 3.1.2 试剂 | 第31-32页 |
| 3.1.3 仪器 | 第32页 |
| 3.2 方法 | 第32-34页 |
| 3.2.1 DEAE-52 分离桔梗多糖 | 第32-33页 |
| 3.2.2 SephadexG-75 纯化桔梗多糖 | 第33页 |
| 3.2.3 桔梗多糖的多糖含量测定 | 第33页 |
| 3.2.4 桔梗多糖的蛋白质含量 | 第33-34页 |
| 3.3 结果与分析 | 第34-36页 |
| 3.3.1 DEAE-52 的分离结果 | 第34-35页 |
| 3.3.2 SephadexG-75 的纯化结果 | 第35-36页 |
| 3.4 结论 | 第36-37页 |
| 第4章 正交设计法优化桔梗硒多糖的制备工艺与急毒实验 | 第37-45页 |
| 4.1 材料、试剂和仪器 | 第37-38页 |
| 4.1.1 材料 | 第37页 |
| 4.1.2 试剂 | 第37页 |
| 4.1.3 仪器 | 第37-38页 |
| 4.2 方法 | 第38-39页 |
| 4.2.1 HPLC法测定硒化多糖中硒含量 | 第38页 |
| 4.2.2 桔梗硒多糖的制备 | 第38-39页 |
| 4.2.3 急毒实验 | 第39页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第39-43页 |
| 4.3.1 硒的标准曲线方程 | 第39页 |
| 4.3.2 单因素考察 | 第39-41页 |
| 4.3.3 正交设计与实验 | 第41页 |
| 4.3.4 制备工艺的优化 | 第41-43页 |
| 4.3.5 验证实验 | 第43页 |
| 4.3.6 急毒实验结果分析 | 第43页 |
| 4.4 结论 | 第43-45页 |
| 第5章桔梗多糖硒化物的抗氧化活性的研究 | 第45-52页 |
| 5.1 材料、试剂和仪器 | 第45-46页 |
| 5.1.1 材料 | 第45页 |
| 5.1.2 试剂 | 第45-46页 |
| 5.1.3 仪器 | 第46页 |
| 5.2 方法 | 第46-49页 |
| 5.2.1 对超氧阴离子自由基的清除作用 | 第46-47页 |
| 5.2.2 对羟基自由基的清除作用 | 第47-48页 |
| 5.2.3 DPPH自由基清除作用 | 第48页 |
| 5.2.4 还原性实验 | 第48-49页 |
| 5.3 结果与分析 | 第49-51页 |
| 5.3.1 对超氧阴离子自由基的清除作用结果 | 第49页 |
| 5.3.2 对羟基自由基的清除作用结果 | 第49-50页 |
| 5.3.3 DPPH清除实验结果 | 第50页 |
| 5.3.4 还原性实验结果 | 第50-51页 |
| 5.4 结论 | 第51-52页 |
| 第6章 桔梗硒多糖对 α-糖苷酶的抑制作用 | 第52-59页 |
| 6.1 材料、仪器和试剂 | 第53页 |
| 6.2 方法 | 第53-55页 |
| 6.2.1 溶液的配制 | 第53-54页 |
| 6.2.2 α-糖苷酶活性的测定 | 第54页 |
| 6.2.3 PNP工作曲线的制备 | 第54页 |
| 6.2.4 α-葡萄糖苷酶最适作用条件的测定 | 第54页 |
| 6.2.5 样品对酶抑制活性的测定 | 第54-55页 |
| 6.2.6 抑制类型的测定 | 第55页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第55-58页 |
| 6.3.1 PNP工作曲线的绘制 | 第55页 |
| 6.3.2 α-葡萄糖苷酶最适作用条件的测定结果 | 第55-56页 |
| 6.3.3 样品及对照品对酶的抑制能力结果 | 第56-57页 |
| 6.3.4 抑制类型的测定结果 | 第57-58页 |
| 6.4 结论 | 第58-59页 |
| 第7章 桔梗硒多糖对CCl4诱导小鼠急性肝损伤的保护作用 | 第59-74页 |
| 7.1 仪器、试剂与材料 | 第59-60页 |
| 7.1.1 主要仪器 | 第59-60页 |
| 7.1.2 主要试剂 | 第60页 |
| 7.1.3 实验药品 | 第60页 |
| 7.1.4 实验动物 | 第60页 |
| 7.2 方法 | 第60-65页 |
| 7.2.1 动物模型的建立 | 第60-61页 |
| 7.2.2 主要试剂配制 | 第61-62页 |
| 7.2.3 血清肝功能检测 | 第62-63页 |
| 7.2.4 肝组织中MDA和GSH含量测定 | 第63-64页 |
| 7.2.5 组织形态学考察 | 第64-65页 |
| 7.2.6 统计学方法 | 第65页 |
| 7.3 实验结果与讨论 | 第65-73页 |
| 7.3.1 实验期间小鼠体重的变化结果 | 第65-66页 |
| 7.3.2 鼠肝（肝重/体重）指数 | 第66页 |
| 7.3.3 对血清中各种酶的测定结果 | 第66-69页 |
| 7.3.4 肝组织中GSH、MDA的含量测定结果 | 第69-71页 |
| 7.3.5 组织病理变化的影响 | 第71-73页 |
| 7.4 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 英文缩写 | 第80-81页 |
| 攻读学位期间发表的学术成果 | 第81页 |
