| 前言 | 第4-6页 |
| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第1章 绪论 | 第17-43页 |
| 1.1 人参皂苷抗癌活性研究进展 | 第17-26页 |
| 1.1.1 人参皂苷的化学结构及体内转化 | 第17-19页 |
| 1.1.2 人参皂苷的抗癌活性 | 第19-26页 |
| 1.1.3 结论与展望 | 第26页 |
| 1.2 人参皂苷药动学研究进展 | 第26-32页 |
| 1.2.1 PDS型人参皂苷药动学研究进展 | 第26-29页 |
| 1.2.2 PTS型人参皂苷药动学研究进展 | 第29-30页 |
| 1.2.3 总结和展望 | 第30-32页 |
| 参考文献 | 第32-43页 |
| 第2章 红参中化学成分的分离及结构鉴定 | 第43-63页 |
| 2.1 材料 | 第43页 |
| 2.1.1 试剂与材料 | 第43页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第43页 |
| 2.2 方法 | 第43-45页 |
| 2.2.1 分离与纯化 | 第43-45页 |
| 2.2.2 化合物鉴定 | 第45页 |
| 2.3 结果 | 第45-61页 |
| 2.4 讨论 | 第61-63页 |
| 第3章 24-OH-PD的抗癌活性研究 | 第63-87页 |
| 3.1 材料 | 第63-64页 |
| 3.1.1 细胞系 | 第63页 |
| 3.1.2 主要药品和试剂 | 第63-64页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第64页 |
| 3.2 方法 | 第64-71页 |
| 3.2.1 溶液的配制 | 第64-65页 |
| 3.2.2 肿瘤细胞的培养 | 第65页 |
| 3.2.3 细胞增殖实验 | 第65-66页 |
| 3.2.4 细胞凋亡率的检测 | 第66-67页 |
| 3.2.5 数据分析及处理软件 | 第67页 |
| 3.2.6 计算机辅助筛选 24-OH-PD的抗癌作用靶点 | 第67-71页 |
| 3.3 结果 | 第71-84页 |
| 3.3.1 24-OH-PD对细胞活力的影响 | 第71-73页 |
| 3.3.2 24-OH-PD对细胞凋亡的作用 | 第73-75页 |
| 3.3.3 24-OH-PD与抗癌作用靶点的对接 | 第75-84页 |
| 3.4 讨论 | 第84-87页 |
| 3.4.1 24-OH-PD抗癌活性的体外试验 | 第84页 |
| 3.4.2 计算机辅助筛选 24-OH-PD的抗癌作用靶点 | 第84-87页 |
| 第4章 24-OH-PD的血药动力学研究 | 第87-107页 |
| 4.1 材料 | 第87-88页 |
| 4.1.1 药品和试剂 | 第87页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第87-88页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第88页 |
| 4.2 方法 | 第88-92页 |
| 4.2.1 血浆样品中 24-OH-PD含量的UPLC-MS/MS测定方法的建立 | 第88-92页 |
| 4.2.2 24-OH-PD在大鼠体内的血药动力学测定 | 第92页 |
| 4.3 结果 | 第92-104页 |
| 4.3.1 方法学特异性 | 第92-95页 |
| 4.3.2 线性范围 | 第95页 |
| 4.3.3 最低检测限和最低定量限 | 第95页 |
| 4.3.4 精密度和准确度 | 第95页 |
| 4.3.5 稳定性 | 第95-97页 |
| 4.3.6 基质效应 | 第97页 |
| 4.3.7 提取回收率 | 第97-98页 |
| 4.3.8 残留效应 | 第98-99页 |
| 4.3.9 静脉给予 24-OH-PD的血药动力学结果 | 第99-104页 |
| 4.4 讨论 | 第104-107页 |
| 4.4.1 UPLC-MS/MS质谱方法的确定 | 第104-105页 |
| 4.4.2 生物样品处理方法的选择 | 第105页 |
| 4.4.3 方法学考察 | 第105页 |
| 4.4.4 静脉给予 24-OH-PD的血药动力学研究 | 第105-107页 |
| 第5章 24-OH-PD与大鼠的血浆蛋白结合率的测定 | 第107-121页 |
| 5.1 材料 | 第107-108页 |
| 5.1.1 药品和试剂 | 第107页 |
| 5.1.2 实验动物 | 第107页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第107-108页 |
| 5.2 方法 | 第108-110页 |
| 5.2.1 透析内液及外液中 24-OH-PD的分析方法的建立 | 第108-110页 |
| 5.2.2 24-OH-PD与大鼠的血浆蛋白结合率的测定 | 第110页 |
| 5.3 结果 | 第110-118页 |
| 5.3.1 方法学考察 | 第110-117页 |
| 5.3.2 24-OH-PD与大鼠血浆蛋白结合率 | 第117-118页 |
| 5.4 讨论 | 第118-121页 |
| 5.4.1 透析内液及外液中 24-OH-PD的分析方法的建立 | 第118-119页 |
| 5.4.2 24-OH-PD与大鼠血浆蛋白结合率 | 第119-121页 |
| 第6章 24-OH-PD的组织分布研究 | 第121-139页 |
| 6.1 材料 | 第121-122页 |
| 6.1.1 药品和试剂 | 第121页 |
| 6.1.2 实验动物 | 第121页 |
| 6.1.3 实验仪器 | 第121-122页 |
| 6.2 方法 | 第122-124页 |
| 6.2.1 生物样品中 24-OH-PD含量的UPLC-MS/MS测定方法的建立 | 第122-124页 |
| 6.2.2 24-OH-PD在大鼠体内的血药动力学测定 | 第124页 |
| 6.3 结果 | 第124-138页 |
| 6.3.1 方法学考察 | 第124-132页 |
| 6.3.2 大鼠静脉给予 24-OH-PD的组织分布情况 | 第132-138页 |
| 6.4 讨论 | 第138-139页 |
| 6.4.1 组织样品中24-OH-PD的分析方法建立 | 第138页 |
| 6.4.2 大鼠静脉注射 5mg/kg24-OH-PD的组织分布 | 第138-139页 |
| 第7章 24-OH-PD的排泄研究 | 第139-155页 |
| 7.1 材料 | 第139页 |
| 7.1.1 药品和试剂 | 第139页 |
| 7.1.2 实验动物 | 第139页 |
| 7.1.3 实验仪器 | 第139页 |
| 7.2 方法 | 第139-143页 |
| 7.2.1 生物样品中 24-OH-PD含量的UPLC-MS/MS测定方法的建立 | 第139-143页 |
| 7.2.2 24-OH-PD在大鼠体内的血药动力学测定 | 第143页 |
| 7.3 结果 | 第143-154页 |
| 7.3.1 方法学考察 | 第143-150页 |
| 7.3.2 静脉给予 5.0 mg/kg 24-OH-PD的尿样排泄结果 | 第150-152页 |
| 7.3.3 静脉给予 5.0 mg/kg 24-OH-PD的粪样排泄结果 | 第152-154页 |
| 7.4 讨论 | 第154-155页 |
| 7.4.1 排泄物样品中 24-OH-PD的分析方法建立 | 第154页 |
| 7.4.2 大鼠静脉给予 5.0 mg/kg 24-OH-PD的排泄 | 第154-155页 |
| 第8章 24-OH-PD的代谢研究 | 第155-173页 |
| 8.1 材料 | 第155页 |
| 8.1.1 药品和试剂 | 第155页 |
| 8.1.2 实验仪器 | 第155页 |
| 8.1.3 实验动物 | 第155页 |
| 8.2 方法 | 第155-157页 |
| 8.2.1 色谱条件 | 第155-156页 |
| 8.2.2 质谱条件 | 第156页 |
| 8.2.3 样品收集 | 第156页 |
| 8.2.4 样品的处理 | 第156-157页 |
| 8.2.5 数据分析 | 第157页 |
| 8.3 结果 | 第157-172页 |
| 8.3.1 24-OH-PD的标准品质谱分析 | 第157-159页 |
| 8.3.2 24-OH-PD大鼠体内代谢物的鉴定 | 第159-164页 |
| 8.3.3 24-OH-PD大鼠体内代谢产物的解析 | 第164-172页 |
| 8.4 讨论 | 第172-173页 |
| 第9章 总结 | 第173-177页 |
| 参考文献 | 第177-183页 |
| 附图 | 第183-193页 |
| 攻读博士期间发表的主要学术论文及其他成果 | 第193-194页 |
| 致谢 | 第194页 |
