| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩写名词表 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 植物胚囊的发育过程及其分子机理 | 第11-15页 |
| 1.1.1 植物胚囊的发育过程 | 第11-13页 |
| 1.1.2 雌配子败育的分子机理 | 第13-14页 |
| 1.1.3 常用的观察植物胚囊的方法 | 第14-15页 |
| 1.2 植物花药的发育过程及其分子机理 | 第15-18页 |
| 1.2.1 植物花药的结构及其发育进程 | 第15-16页 |
| 1.2.2 植物花药发育的时期划分及其特征 | 第16-17页 |
| 1.2.3 植物花药发育的分子机理 | 第17-18页 |
| 1.3 植物减数分裂的过程及研究进展 | 第18-20页 |
| 1.3.1 减数分裂时期的划分 | 第18-19页 |
| 1.3.2 植物减数分裂的研究进展 | 第19-20页 |
| 1.4 核仁与减数分裂的关系 | 第20-22页 |
| 1.5 本研究的背景 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-33页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-32页 |
| 2.2.1 总DNA的提取以及PCR检测FM195A和FM195B基因型 | 第23-24页 |
| 2.2.2 花粉管延伸观察方法 | 第24页 |
| 2.2.3 激光共聚焦观察胚珠发育 | 第24-25页 |
| 2.2.4 雌配子胼胝质积累的观察方法 | 第25页 |
| 2.2.5 花药的石蜡切片制作及染色观察 | 第25-26页 |
| 2.2.6 雄配子胼胝质积累的观察方法 | 第26-27页 |
| 2.2.7 小孢子母细胞染色体展片 | 第27-28页 |
| 2.2.8 荧光原位杂交（FISH）检测染色体配对 | 第28页 |
| 2.2.9 减数分裂过程中的蛋白质免疫组化 | 第28-29页 |
| 2.2.10 透射电镜样品制备与观察 | 第29页 |
| 2.2.11 BnMs5 基因与AGL1 启动子基因融合转化甘蓝型油菜 | 第29-32页 |
| 2.3 相关生物信息学网址及所用软件 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-56页 |
| 3.1FM195A和FM195B基因型鉴定 | 第33页 |
| 3.1.1FM195A和FM195B的来源和保持 | 第33页 |
| 3.1.2FM195A和FM195B分子标记鉴定基因型 | 第33页 |
| 3.2 受精过程观察 | 第33-34页 |
| 3.3 雌配子体败育特征 | 第34-39页 |
| 3.3.1FM195A和FM195B胚珠发育过程及比较 | 第34-37页 |
| 3.3.2FM195A和FM195B胚珠胼胝质积累及比较 | 第37-39页 |
| 3.4 雄配子体败育特征 | 第39-44页 |
| 3.4.1 FM195A和FM195B花药切片观察 | 第39-40页 |
| 3.4.2 FM195A和FM195B花药胼胝质积累观察及比较 | 第40-42页 |
| 3.4.3 FM195A和FM195B小孢子母细胞染色体展片观察 | 第42-44页 |
| 3.5 荧光原位杂交检测FM195A染色体配对异常 | 第44-47页 |
| 3.6 BnMs5 的缺失不影响BnSWI1、BnMLH3 和BnSYN在染色体上定位 | 第47-50页 |
| 3.7 透射电镜观察减数分裂I的细胞核 | 第50-51页 |
| 3.8 BnMs5~a基因与AGL1 启动子基因融合转化油菜 | 第51-56页 |
| 3.8.1 载体的构建 | 第52页 |
| 3.8.2 阳性单株的检测 | 第52-53页 |
| 3.8.3 qRT-PCR检测BnMs5 的表达量 | 第53-54页 |
| 3.8.4 转基因植株雌配子育性恢复 | 第54-56页 |
| 4 讨论 | 第56-60页 |
| 4.1 FM195A雌雄配子败育时期及特点 | 第56-58页 |
| 4.2 BnMs5 减数分裂中的功能分析 | 第58-59页 |
| 4.3 转基因雌配子恢复育性的意义 | 第59页 |
| 4.4 核仁与减数分裂的关系 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 附录 | 第68-70页 |
| 附录A | 第68-70页 |
| 附录B | 第70页 |
