中文摘要 | 第4-9页 |
Abstract | 第9-13页 |
缩略语/符号说明 | 第17-19页 |
前言 | 第19-24页 |
研究现状、成果 | 第19-22页 |
研究目的、方法 | 第22-24页 |
一、重型再生障碍性贫血患者髓样树突状细胞与造血干祖细胞内差异蛋白质同源性/交叉性比对 | 第24-44页 |
1.1 对象与方法 | 第24-29页 |
1.1.1 研究对象 | 第24-25页 |
1.1.2 主要试剂和仪器 | 第25页 |
1.1.3 研究方法 | 第25-29页 |
1.1.4 统计学处理 | 第29页 |
1.2 结果 | 第29-38页 |
1.2.1 差异蛋白质同源性比对 | 第29-34页 |
1.2.2 实时荧光定量PCR检测BMMNC LILRAs mRNA表达 | 第34-38页 |
1.3 讨论 | 第38-43页 |
1.4 小结 | 第43-44页 |
二、LILRA在重型再生障碍性贫血患者体内的表达 | 第44-71页 |
2.1 对象与方法 | 第44-54页 |
2.1.1 研究对象 | 第44页 |
2.1.2 主要试剂和仪器 | 第44-48页 |
2.1.3 研究方法 | 第48-54页 |
2.1.4 统计学处理 | 第54页 |
2.2 结果 | 第54-66页 |
2.2.1 FCM检测LILRA3和LILRA5表达 | 第54-55页 |
2.2.2 骨髓LILRA3+ /CD34+、LILRA3+ /CD3+ CD8+、LILRA3+ /CD11c+ HLA-DR+、LILRA5+ /CD34+、LILRA5+ /CD3+ CD8+、LILRA5+ /CD11c+ HLA-DR+比例 | 第55-60页 |
2.2.3 诱导mDCs的形态、免疫表型鉴定及分选后纯度检测 | 第60-62页 |
2.2.4 Western Blot方法检测LILRA3和LILRA5表达 | 第62-63页 |
2.2.5 qPCR方法检测mDC细胞LILRA3表达 | 第63-64页 |
2.2.6 ELISA检测血清LILRA3蛋白水平 | 第64页 |
2.2.7 各指标间相关性分析 | 第64-66页 |
2.3 讨论 | 第66-70页 |
2.4 小结 | 第70-71页 |
三、LILRA3在重型再生障碍性贫血患者诱导mDC激活及靶细胞凋亡的体外细胞模型研究 | 第71-84页 |
3.1 对象与方法 | 第71-75页 |
3.1.1 研究对象 | 第71-72页 |
3.1.2 主要试剂和仪器 | 第72-74页 |
3.1.3 研究方法 | 第74-75页 |
3.2 结果 | 第75-79页 |
3.2.1 细胞转染结果验证 | 第75-76页 |
3.2.2 分选细胞纯度检测 | 第76页 |
3.2.3 FCM检测CD8+细胞上LILRA3配体表达 | 第76-77页 |
3.2.4 FCM检测混合培养细胞功能分子表达 | 第77-79页 |
3.2.5 CCK-8 法检测CTL增殖 | 第79页 |
3.3 讨论 | 第79-83页 |
3.4 小结 | 第83-84页 |
四、免疫介导骨髓衰竭小鼠模型构建 | 第84-104页 |
4.1 对象与方法 | 第84-91页 |
4.1.1 研究对象 | 第84页 |
4.1.2 主要试剂和仪器 | 第84-87页 |
4.1.3 研究方法 | 第87-91页 |
4.2 结果 | 第91-100页 |
4.2.1 CByB6F1小鼠一般情况、外周血象及脏器病理 | 第91-96页 |
4.2.2 小鼠骨髓细胞计数、集落培养及LSK比例 | 第96-99页 |
4.2.3 FCM检测AA小鼠PIR-A/B表达 | 第99-100页 |
4.3 讨论 | 第100-103页 |
4.4 小结 | 第103-104页 |
全文结论 | 第104-106页 |
论文创新点 | 第106-107页 |
参考文献 | 第107-115页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第115-116页 |
附录 | 第116-118页 |
综述 1.获得性再生障碍性贫血小鼠模型的研究进展 | 第118-128页 |
综述1 参考文献 | 第125-128页 |
综述 2.白细胞免疫球蛋白样受体的遗传多样性及其与疾病的关联 | 第128-143页 |
综述2 参考文献 | 第134-143页 |
发表的非相关文章 | 第143-149页 |
致谢 | 第149-150页 |
个人简历 | 第150页 |