摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
第一章 引言 | 第11-25页 |
1.1 杂草及抗药性概述 | 第11-19页 |
1.1.1 农田杂草的危害现状 | 第11页 |
1.1.2 杂草抗药性的发生 | 第11-12页 |
1.1.3 抗药性的形成原因 | 第12-13页 |
1.1.4 抗药性的发展 | 第13-17页 |
1.1.5 杂草抗药性机理 | 第17-18页 |
1.1.6 抗药性风险的评估 | 第18页 |
1.1.7 杂草抗药性的综合治理 | 第18-19页 |
1.2 ACCase抑制类除草剂 | 第19-22页 |
1.2.1 ACCase抑制类除草剂的发展 | 第19-20页 |
1.2.2 杂草对ACCase抑制剂类除草剂的抗性情况 | 第20-22页 |
1.2.2.1 由于作用位点的改变(靶标酶抗性)使除草剂不能与靶标酶结合而导致的防除效果降低 | 第21页 |
1.2.2.2 代谢速度增加,使得除草剂在杂草体内很快被降解成无效代谢物而失效 | 第21页 |
1.2.2.3 诱导ACCase的过量表达,来弥补被除草剂钝化的酶,从而产生抗性 | 第21页 |
1.2.2.4 抗性种群中突变的ACCase可通过ACCase结构基因中单基因的突变而遗传 | 第21-22页 |
1.2.2.5 隔离作用 | 第22页 |
1.2.2.6 部分膜的突变使得抗性种群将除草剂诱导的膜去极化恢复 | 第22页 |
1.2.2.7 乙烯的产生量减少, | 第22页 |
1.3 本研究的目的与意义 | 第22-24页 |
1.4 技术路线 | 第24-25页 |
第二章 野燕麦、旱雀麦对高效氟吡甲禾灵的抗药性检测 | 第25-35页 |
2.1 材料与方法 | 第25-28页 |
2.1.1 供试材料和试剂 | 第25-27页 |
2.1.1.1 供试种子 | 第25-27页 |
2.1.1.2 供试药剂 | 第27页 |
2.1.2 实验方法 | 第27-28页 |
2.1.2.1 培养皿种子检测法 | 第27页 |
2.1.2.2 整株水平测定 | 第27-28页 |
2.1.3 数据处理 | 第28页 |
2.2 结果与分析 | 第28-33页 |
2.2.1 培养皿种子测定法 | 第28-30页 |
2.2.1.1 培养皿种子测定法对野燕麦种群的检测 | 第28-30页 |
2.2.1.2 培养皿种子测定法对旱雀麦种群的检测 | 第30页 |
2.2.2 整株测定法 | 第30-33页 |
2.2.2.1 整株测定法对野燕麦种群的检测 | 第30-32页 |
2.2.2.2 整株测定法对旱雀麦种群的检测 | 第32-33页 |
2.3 结论 | 第33-35页 |
第三章 整株法对野燕麦、旱雀麦次年抗性水平的监测 | 第35-39页 |
3.1 材料与方法 | 第35-36页 |
3.1.1 供试材料和试剂 | 第35-36页 |
3.1.1.1 供试种子 | 第35-36页 |
3.1.1.2 供试药剂 | 第36页 |
3.1.2 实验方法 | 第36页 |
3.1.3 数据处理 | 第36页 |
3.2 结果与分析 | 第36-38页 |
3.2.1 整株测定法对野燕麦种群的检测 | 第36-37页 |
3.2.2 整株测定法对旱雀麦种群的检测 | 第37-38页 |
3.3 讨论 | 第38-39页 |
第四章 野燕麦、旱雀麦对高效氟吡甲禾灵生理生化指标的测定 | 第39-50页 |
4.1 材料与方法 | 第39-42页 |
4.1.1 供试材料和试剂 | 第39页 |
4.1.1.1 供试种子 | 第39页 |
4.1.1.2 供试药剂 | 第39页 |
4.1.1.3 所需仪器和用品 | 第39页 |
4.1.2 实验方法 | 第39-42页 |
4.1.2.1 样品的准备 | 第39-40页 |
4.1.2.2 叶绿素含量的测定 | 第40页 |
4.1.2.3 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第40页 |
4.1.2.4 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第40-41页 |
4.1.2.5 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第41-42页 |
4.2 结果与分析 | 第42-49页 |
4.2.1 叶绿素含量的测定结果 | 第42-43页 |
4.2.2 丙二醛(MDA)含量的测定结果 | 第43-46页 |
4.2.3 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定结果 | 第46-47页 |
4.2.4 过氧化氢酶(CAT)活性的测定结果 | 第47-49页 |
4.3 讨论 | 第49-50页 |
第五章 野燕麦、旱雀麦对高效氟吡甲禾灵代谢酶抗性机理研究 | 第50-60页 |
5.1 材料与方法 | 第50-54页 |
5.1.1 供试材料和试剂 | 第50页 |
5.1.1.1 供试种子 | 第50页 |
5.1.1.2 供试药剂 | 第50页 |
5.1.1.3 所需仪器 | 第50页 |
5.1.2 实验方法 | 第50-54页 |
5.1.2.1 样品的采集 | 第50页 |
5.1.2.2 粗酶的提取 | 第50-51页 |
5.1.2.3 GSTs活性的测定 | 第51-52页 |
5.1.2.4 细胞色素P450活性的测定 | 第52-54页 |
5.2 结果与分析 | 第54-58页 |
5.2.1 GSTs活性的测定结果 | 第54-56页 |
5.2.1.1 野燕麦GSTs活性的测定结果 | 第54-55页 |
5.2.1.2 旱雀麦GSTs活性的测定结果 | 第55-56页 |
5.2.2 细胞色素P450活性的测定结果 | 第56-58页 |
5.2.2.1 野燕麦细胞色素P450活性的测定结果 | 第56-57页 |
5.2.2.2 旱雀麦细胞色素P450活性的测定结果 | 第57-58页 |
5.3 讨论 | 第58-60页 |
第六章 野燕麦、旱雀麦交互抗性的研究 | 第60-63页 |
6.1 材料与方法 | 第60-61页 |
6.1.1 供试材料和试剂 | 第60页 |
6.1.1.1 供试种子 | 第60页 |
6.1.1.2 供试药剂 | 第60页 |
6.1.2 实验方法 | 第60页 |
6.1.3 数据处理方法 | 第60-61页 |
6.2 结果与分析 | 第61-62页 |
6.3 讨论 | 第62-63页 |
第七章 结论与讨论 | 第63-66页 |
7.1 结论 | 第63-64页 |
7.2 讨论 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
作者简介 | 第72页 |