| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要缩略词表 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-34页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 手性拆分方法 | 第13-17页 |
| 1.2.1 手性拆分方法的介绍 | 第13页 |
| 1.2.2 手性拆分分类 | 第13-17页 |
| 1.2.2.1 结晶拆分法 | 第14页 |
| 1.2.2.2 酶拆分法 | 第14页 |
| 1.2.2.3 衍生化拆分法 | 第14页 |
| 1.2.2.4 膜拆分法 | 第14-15页 |
| 1.2.2.5 化学拆分法 | 第15-17页 |
| 1.3 毛细管电泳富集方法 | 第17-20页 |
| 1.3.1 电堆积 | 第18-19页 |
| 1.3.2 大体积进样样品堆积技术 | 第19页 |
| 1.3.3 场放大进样样品堆积技术 | 第19-20页 |
| 1.4 毛细管电泳涂层技术 | 第20-21页 |
| 1.4.1 化学键合涂层技术 | 第20页 |
| 1.4.2 物理吸附涂层技术 | 第20-21页 |
| 1.5 适配体在手性分离、检测中的应用 | 第21-32页 |
| 1.5.1 适配体的介绍 | 第21-22页 |
| 1.5.2 适配体的优点 | 第22-23页 |
| 1.5.3 手性适配体筛选介绍 | 第23-25页 |
| 1.5.4 适配体在手性检测中的应用 | 第25-28页 |
| 1.5.4.1 适配体应用于电化学进行手性检测 | 第25-26页 |
| 1.5.4.2 适配体应用于比色法进行手性检测 | 第26页 |
| 1.5.4.3 适配体应用于荧光法进行手性检测 | 第26-27页 |
| 1.5.4.4 适配体应用于毛细管电泳进行手性检测 | 第27-28页 |
| 1.5.5 适配体在手性分离中的应用 | 第28-31页 |
| 1.5.5.1 适配体作为手性固定相进行手性分离 | 第29-30页 |
| 1.5.5.2 适配体作为手性添加剂进行手性分离 | 第30-31页 |
| 1.5.6 适配体应用发展前景 | 第31-32页 |
| 1.6 本论文研究的主要目的和内容 | 第32-34页 |
| 第二章 胶束毛细管电动色谱结合区带灌注-亲和毛细管电泳法手性分离色氨酸 | 第34-46页 |
| 2.1 引言 | 第34-36页 |
| 2.2 实验部分 | 第36-37页 |
| 2.2.1 仪器 | 第36页 |
| 2.2.2 试剂 | 第36-37页 |
| 2.2.3 溶液的配制 | 第37页 |
| 2.2.4 电泳条件 | 第37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-45页 |
| 2.3.1 方法原理 | 第37-40页 |
| 2.3.2 分离条件的优化 | 第40-44页 |
| 2.3.2.1 胆酸钠浓度的选择 | 第40-41页 |
| 2.3.2.2 DNA适配体浓度的选择 | 第41页 |
| 2.3.2.3 区带灌注时间的选择 | 第41-42页 |
| 2.3.2.4 运行缓冲液中Mg~(2+)离子浓度的选择 | 第42-43页 |
| 2.3.2.5 运行缓冲液中Na~+离子浓度的选择 | 第43页 |
| 2.3.2.6 分离电压的选择 | 第43-44页 |
| 2.3.3 重现性、线性范围和检测限 | 第44-45页 |
| 2.4 小结 | 第45-46页 |
| 第三章 样品堆积-胶束毛细管电动色谱结合区带灌注-亲和毛细管电泳法手性分离布洛芬 | 第46-57页 |
| 3.1 引言 | 第46-47页 |
| 3.2 实验部分 | 第47-49页 |
| 3.2.1 仪器 | 第47-48页 |
| 3.2.2 试剂 | 第48页 |
| 3.2.3 溶液的配制 | 第48页 |
| 3.2.4 电泳条件 | 第48-49页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第49-56页 |
| 3.3.1 CZE分离条件的优化 | 第49-54页 |
| 3.3.1.1 运行缓冲液种类的选择 | 第49页 |
| 3.3.1.2 运行缓冲液pH的选择 | 第49-50页 |
| 3.3.1.3 运行缓冲液浓度的选择 | 第50-51页 |
| 3.3.1.4 适配体浓度的选择 | 第51页 |
| 3.3.1.5 区带灌注时间的选择 | 第51-53页 |
| 3.3.1.6 分离电压的选择 | 第53-54页 |
| 3.3.2 场放大进样(FASI)条件的优化 | 第54-56页 |
| 3.3.2.1 场放大进样水柱区带的优化 | 第54页 |
| 3.3.2.2 场放大进样量的优化 | 第54-56页 |
| 3.3.2.3 重现性、线性范围和检测限 | 第56页 |
| 3.4 小结 | 第56-57页 |
| 第四章 核酸修饰的纳米粒子应用于手性分离 | 第57-68页 |
| 4.1 引言 | 第57-59页 |
| 4.2 实验部分 | 第59-61页 |
| 4.2.1 仪器 | 第59页 |
| 4.2.2 试剂 | 第59-60页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第60-61页 |
| 4.2.3.1 纳米金的合成 | 第60页 |
| 4.2.3.2 电泳条件 | 第60页 |
| 4.2.3.3 适配体活化及修饰纳米金 | 第60-61页 |
| 4.2.3.4 DL-色氨酸手性拆分 | 第61页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第61-67页 |
| 4.3.1 方法原理 | 第61-63页 |
| 4.3.2 分离条件优化 | 第63-65页 |
| 4.3.2.1 纳米金粒径的选择 | 第63-64页 |
| 4.3.2.2 离心转速的选择 | 第64-65页 |
| 4.3.3 纳米金修饰的适配体的重复利用可能性研究 | 第65-66页 |
| 4.3.4 最优条件下的异构体分离 | 第66-67页 |
| 4.4 小结 | 第67-68页 |
| 第五章 POEGMA涂层毛细管在蛋白质分离中的应用 | 第68-85页 |
| 5.1 引言 | 第68-70页 |
| 5.2 实验部分 | 第70-73页 |
| 5.2.1 仪器 | 第70页 |
| 5.2.2 试剂 | 第70-71页 |
| 5.2.3 标准溶液的配制 | 第71页 |
| 5.2.4 POEGMA的合成 | 第71页 |
| 5.2.5 POEGMA涂层毛细管制备 | 第71-72页 |
| 5.2.6 电渗流(EOF)的测定 | 第72页 |
| 5.2.7 电泳条件 | 第72-73页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第73-84页 |
| 5.3.1 POEGMA涂层的毛细管的非特异性吸附 | 第73页 |
| 5.3.2 不同pH值下EOF的抑制 | 第73-75页 |
| 5.3.3 POEGMA修饰的毛细管对蛋白质分离的影响 | 第75-77页 |
| 5.3.3.1 APTES浓度的选择 | 第75-76页 |
| 5.3.3.2 不同聚合时间的选择 | 第76-77页 |
| 5.3.4 电泳分离条件对蛋白质分离的影响 | 第77-81页 |
| 5.3.4.1 运行缓冲液pH的选择 | 第77-78页 |
| 5.3.4.2 运行缓冲液浓度的选择 | 第78-79页 |
| 5.3.4.3 分离电压的选择 | 第79-80页 |
| 5.3.4.4 进样时间的选择 | 第80-81页 |
| 5.3.5 蛋白质在不同毛细管中分离的比较 | 第81-82页 |
| 5.3.6 POEGMA涂层毛细管稳定性与重现性 | 第82-83页 |
| 5.3.7 线性范围和检测限 | 第83-84页 |
| 5.4 小结 | 第84-85页 |
| 第六章 POEGMA涂层毛细管在藻类肝毒素分离中的应用 | 第85-100页 |
| 6.1 引言 | 第85-86页 |
| 6.2 实验部分 | 第86-88页 |
| 6.2.1 仪器 | 第86-87页 |
| 6.2.2 试剂 | 第87页 |
| 6.2.3 溶液的配置 | 第87页 |
| 6.2.4 电泳条件 | 第87-88页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第88-99页 |
| 6.3.1 CZE分离条件的优化 | 第88-92页 |
| 6.3.1.1 缓冲液pH的选择 | 第88-89页 |
| 6.3.1.2 运行缓冲液浓度的选择 | 第89-90页 |
| 6.3.1.3 分离电压的选择 | 第90-91页 |
| 6.3.1.4 POEGMA涂层毛细管与裸管分离的对比 | 第91页 |
| 6.3.1.5 重现性、线性关系与检测限 | 第91-92页 |
| 6.3.2 大体积进样(LVSS)条件的优化 | 第92-99页 |
| 6.3.2.1 LVSS的原理 | 第92-93页 |
| 6.3.2.2 有机添加剂的选择 | 第93-94页 |
| 6.3.2.3 分离电压的选择 | 第94-95页 |
| 6.3.2.4 进样时间的选择 | 第95-96页 |
| 6.3.2.5 重现性、线性关系与检测限 | 第96页 |
| 6.3.2.6 不同分离方法的对比 | 第96-97页 |
| 6.3.2.7 实际样品的测定 | 第97-99页 |
| 6.4 小结 | 第99-100页 |
| 第七章 BSA修饰的POEGMA涂层毛细管在色氨酸手性分离中的应用 | 第100-109页 |
| 7.1 引言 | 第100-101页 |
| 7.2 实验部分 | 第101-103页 |
| 7.2.1 仪器 | 第101-102页 |
| 7.2.2 试剂 | 第102页 |
| 7.2.3 实验方法 | 第102-103页 |
| 7.2.3.1 溶液的配制 | 第102页 |
| 7.2.3.2 BSA物理吸附的方法 | 第102页 |
| 7.2.3.3 电泳条件 | 第102-103页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第103-108页 |
| 7.3.1 运行缓冲液pH的选择 | 第103-104页 |
| 7.3.2 运行缓冲液浓度的选择 | 第104页 |
| 7.3.3 分离电压的选择 | 第104-105页 |
| 7.3.4 稳定性考察 | 第105-106页 |
| 7.3.5 重现性、线性关系与检测限 | 第106页 |
| 7.3.6 实际样品的测定 | 第106-108页 |
| 7.4 小结 | 第108-109页 |
| 总结论 | 第109-111页 |
| 参考文献 | 第111-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
| 个人简历 | 第130页 |
| 攻读博士学位期间发表的文章 | 第130页 |
