| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-16页 |
| 研究现状、成果 | 第11-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-16页 |
| 对象和方法 | 第16-31页 |
| 1.1 主要材料、试剂与仪器设备 | 第16-17页 |
| 1.2 体内实验方法 | 第17-24页 |
| 1.2.1 实验动物 | 第17页 |
| 1.2.2 小鼠肝脏热缺血模型的建立 | 第17页 |
| 1.2.3 标本收集 | 第17页 |
| 1.2.4 小鼠的肝脏热缺血损伤后miRNAs表达谱建立 | 第17页 |
| 1.2.5 RT-qPCR验证筛选结果并选取与HIF-1α 相关联mi RNA进行检测 | 第17-19页 |
| 1.2.6 Western blot检测小鼠肝脏热缺血后HIF-1α 蛋白的表达变化 | 第19-21页 |
| 1.2.7 肝组织的石蜡切片制备 | 第21-22页 |
| 1.2.8 肝组织切片凋亡变化 | 第22-23页 |
| 1.2.9 统计方法 | 第23-24页 |
| 1.3 体外实验方法： | 第24-31页 |
| 1.3.1 细胞样本 | 第24页 |
| 1.3.2 细胞培养 | 第24-25页 |
| 1.3.3 细胞糖氧剥夺模型建立和分组 | 第25页 |
| 1.3.4 RT-qPCR检测糖氧剥夺 1h后miR3385p表达差异变化 | 第25-27页 |
| 1.3.5 Western blot检测糖氧剥夺 1 h后的HIF-1α 蛋白的表达变化 | 第27-29页 |
| 1.3.6 流式细胞仪检测凋亡变化 | 第29页 |
| 1.3.7 miRNA3385p mimic物进行转染并用RT-qPCR进行验证 | 第29-30页 |
| 1.3.8 Western blot检测HIF-1α、VEGFR2、Notch 1 蛋白的表达变化 | 第30页 |
| 1.3.9 流式细胞仪检测miR3385p过表达后细胞凋亡变化 | 第30页 |
| 1.3.10 统计方法 | 第30-31页 |
| 结果 | 第31-47页 |
| 2.1 小鼠的肝脏热缺血损伤后miRNAs表达谱 | 第31-32页 |
| 2.2 小鼠肝脏热缺血后miR3385p表达增多 | 第32-34页 |
| 2.3 Western blot检测小鼠肝脏热缺血损伤后HIF-1α 蛋白表达增多 | 第34-35页 |
| 2.4 小鼠肝脏组织HE染色结果 | 第35-36页 |
| 2.5 小鼠肝脏的热缺血损伤后细胞凋亡增多 | 第36-38页 |
| 2.6 细胞糖氧剥夺 1 h后miR3385p表达增多 | 第38-39页 |
| 2.7 Western blot检测细胞糖氧剥夺 1 h后HIF-1α 蛋白表达增多 | 第39-40页 |
| 2.8 流式细胞仪检测细胞糖氧剥夺 1 h后凋亡增多 | 第40-41页 |
| 2.9 miRNA3385p mimic物转染后miRNA3385p表达增多 | 第41-42页 |
| 2.10 miR3385p过表达后HIF-1α、VEGFR2、Notch 1 蛋白表达减少 | 第42-44页 |
| 2.11 miR3385p过表达后细胞凋亡增多 | 第44-47页 |
| 讨论 | 第47-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第56-57页 |
| 综述 microRNA与缺血再灌注损伤的研究进展 | 第57-73页 |
| 综述参考文献 | 第66-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
