摘要 | 第2-4页 |
ABSTRACT | 第4-5页 |
缩略词表(Abbreviation) | 第6-9页 |
文献综述 | 第9-17页 |
1.1 杏鲍菇概述及研究现状 | 第9-11页 |
1.1.1 杏鲍菇简介 | 第9页 |
1.1.2 杏鲍菇的营养价值 | 第9-10页 |
1.1.3 杏鲍菇研究现状 | 第10-11页 |
1.2 生物活性肽及研究现状 | 第11-14页 |
1.2.1 活性肽简介 | 第11页 |
1.2.2 生物活性肽制备技术研究现状 | 第11-14页 |
1.3 高F值寡肽简介 | 第14-17页 |
1.3.1 高F值寡肽概述 | 第14-15页 |
1.3.2 高F值寡肽的生理功能 | 第15-16页 |
1.3.3 高F值国内外研究进展 | 第16-17页 |
1 前言 | 第17-18页 |
2 材料与方法 | 第18-28页 |
2.1 材料与仪器 | 第18-19页 |
2.1.1 实验材料 | 第18页 |
2.1.2 主要试剂 | 第18页 |
2.1.3 仪器设备 | 第18-19页 |
2.2 实验方法 | 第19-28页 |
2.2.1 超声破碎辅助蜗牛酶提取杏鲍菇菌体蛋白 | 第19-20页 |
2.2.2 蜗牛酶水解菌体细胞壁条件优化设计 | 第20-21页 |
2.2.3 杏鲍菇蛋白液水解条件探究 | 第21-22页 |
2.2.4 蛋白水解酶单因素实验 | 第22-24页 |
2.2.5 活性炭对蛋白水解液的脱芳处理 | 第24-25页 |
2.2.6 超滤去除大分子多肽 | 第25页 |
2.2.7 大孔树脂脱盐处理 | 第25-27页 |
2.2.8 寡肽液的凝胶层析及分子量分布的测定 | 第27页 |
2.2.9 氨基酸组成分析及F值的测定 | 第27-28页 |
3 结果与分析 | 第28-56页 |
3.1 杏鲍菇菌体破壁提蛋白工艺研究 | 第28-35页 |
3.1.1 等电点的确定 | 第28页 |
3.1.2 超声破碎条件对蛋白提取率的影响 | 第28-32页 |
3.1.3 蜗牛酶水解细胞壁对蛋白提取率的影响 | 第32-35页 |
3.1.4 超声破碎辅助酶解提取蛋白效果验证实验 | 第35页 |
3.2 蛋白提取液最佳酶解工艺的确定 | 第35-43页 |
3.2.1 内外肽酶的粗筛 | 第35-36页 |
3.2.2 内肽酶(碱性)水解条件优化 | 第36-39页 |
3.2.3 外肽酶(风味)水解条件优化 | 第39-42页 |
3.2.4 双酶复合水解 | 第42-43页 |
3.3 高F值寡肽的脱芳处理 | 第43-48页 |
3.3.1 活性肽型号的筛选 | 第43页 |
3.3.2 活性炭脱芳处里单因素试验 | 第43-45页 |
3.3.3 模型的建立及显著性检验 | 第45-47页 |
3.3.4 活性炭响应面分析与优化 | 第47页 |
3.3.5 响应面模型的验证 | 第47页 |
3.3.6 氨基酸组成分析及F值的测定结果 | 第47-48页 |
3.4 高F值寡肽的分离纯化 | 第48-49页 |
3.4.1 超滤去除大分子多肽 | 第48-49页 |
3.5 大孔树脂脱盐处理 | 第49-54页 |
3.5.1 大孔树脂型号的筛选 | 第49-50页 |
3.5.2 大孔树脂静态吸附时间的确定 | 第50页 |
3.5.3 大孔树脂静态吸附p H的确定 | 第50-51页 |
3.5.4 静态吸附后解析液浓度的确定 | 第51页 |
3.5.5 静态解析时间的确定 | 第51-52页 |
3.5.6 大孔树脂动态吸附条件下进样流速的确定 | 第52页 |
3.5.7 大孔树脂动态解析条件下洗脱液流速的确定 | 第52-53页 |
3.5.8 大孔树脂动态解析时间的确定 | 第53页 |
3.5.9 大孔树脂动态吸附条件确定 | 第53-54页 |
3.6 Sephadex G-15 凝胶过滤层析分离 | 第54-56页 |
4 讨论 | 第56-60页 |
4.1 以杏鲍菇为原料制备高F值寡肽的探讨 | 第56页 |
4.2 超声破碎辅助蜗牛酶水解杏鲍菇细胞壁提取蛋白的探讨 | 第56-57页 |
4.3 内外肽酶结合水解菌体蛋白液的探讨 | 第57-58页 |
4.4 高F值寡肽的分离纯化探讨 | 第58-60页 |
5 结论 | 第60-61页 |
6 展望 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-67页 |
致谢 | 第67-68页 |
作者简介 | 第68-69页 |
导师简介 | 第69-70页 |