| 致谢 | 第4-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-16页 |
| 1.1 干旱对小麦产量的影响 | 第9页 |
| 1.2 干旱造成小麦叶片膜脂过氧化 | 第9-10页 |
| 1.3 干旱胁迫下小麦幼苗叶片抗氧化酶活性的调节 | 第10页 |
| 1.4 脱落酸对小麦干旱胁迫的调节作用 | 第10-11页 |
| 1.5 干旱胁迫造成小麦叶片光合作用的损伤 | 第11页 |
| 1.6 干旱胁迫下小麦抗逆生长过程中的基因表达调控机制 | 第11-14页 |
| 1.6.1 psb基因家族 | 第11-12页 |
| 1.6.2 TaNAC2基因 | 第12-13页 |
| 1.6.3 TaDREB2基因 | 第13-14页 |
| 1.7 外源5-氨基乙酰丙酸对植物抗逆境生长的调节作用 | 第14-16页 |
| 2 引言 | 第16页 |
| 3 材料与方法 | 第16-25页 |
| 3.1 实验设计 | 第16-17页 |
| 3.2 实验仪器与试剂 | 第17-18页 |
| 3.2.1 主要试剂及试剂盒 | 第17页 |
| 3.2.2 耗材器具 | 第17页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第17-18页 |
| 3.3 测定项目与方法 | 第18-24页 |
| 3.3.1 RWC 和叶绿素含量的测定 | 第18页 |
| 3.3.2 MDA含量和H_2O_2含量的测定 | 第18-19页 |
| 3.3.3 抗氧化物酶活性的测定 | 第19页 |
| 3.3.3.1 过氧化物酶（POD）活性的测定 | 第19页 |
| 3.3.3.2 过氧化氢酶（CAT）活性的测定 | 第19页 |
| 3.3.3.3 抗环血酸过氧化物酶（APX）活性的测定 | 第19页 |
| 3.3.3.4 超氧化物歧化酶（SOD）活性的测定 | 第19页 |
| 3.3.4 脱落酸含量的测定 | 第19-20页 |
| 3.3.5 叶绿素荧光动力学参数的测定 | 第20页 |
| 3.3.6 小麦总RNA的提取和Real time PCR分析 | 第20-24页 |
| 3.3.6.1 总RNA提取前的预处理 | 第20页 |
| 3.3.6.2 引物设计与合成 | 第20-21页 |
| 3.3.6.3 总RNA的提取、纯化与cDNA第一链的合成 | 第21-22页 |
| 3.3.6.4 反转录产物检测 | 第22页 |
| 3.3.6.5 Real time PCR | 第22-24页 |
| 3.3.7 D1蛋白表达测定 | 第24页 |
| 3.4 数据分析 | 第24-25页 |
| 4 结果与分析 | 第25-36页 |
| 4.1 表型图片 | 第25-26页 |
| 4.2 干旱对小麦叶片相对含水量及叶绿素含量的影响及 5-ALA的调节作用 | 第26-27页 |
| 4.3 干旱对小麦叶片MDA及H2O2含量的影响及 5-ALA的调节作用 | 第27-28页 |
| 4.4 干旱胁迫对不同小麦品种抗氧化酶活性的影响及 5-ALA的调节作用 | 第28-29页 |
| 4.5 干旱对小麦叶片ABA含量的影响及 5-ALA的调节作用 | 第29-30页 |
| 4.6 干旱胁迫对不同小麦PSII功能的影响及 5-ALA的调节作用 | 第30-31页 |
| 4.7 小麦叶片总RNA提取与纯化 | 第31-32页 |
| 4.8 基因扩增产物检测 | 第32-33页 |
| 4.9 干旱胁迫对不同小麦品种psb A、psb D、Ta NAC2和Ta DREB2基因的影响及 5-ALA的调节作用 | 第33-34页 |
| 4.10 SDS–PAGE分析及Western Blot | 第34-36页 |
| 5 讨论 | 第36-40页 |
| 5.1 外源 5-ALA处理可以提高干旱胁迫下小麦幼苗的渗透调节能力 | 第36-37页 |
| 5.2 外源 5-ALA处理可以提高干旱胁迫下小麦幼苗抗氧化酶的活性 | 第37页 |
| 5.3 外源 5-ALA处理可以维持干旱胁迫下小麦幼苗的PSII的功能 | 第37页 |
| 5.4 外源 5-ALA对干旱胁迫下小麦幼苗叶片psb A基因、psb D基因、Ta NAC2基因和Ta DREB2基因的表达水平具有调节作用 | 第37-40页 |
| 参考文献 | 第40-49页 |
| 英文摘要 | 第49-51页 |
