| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 1 文献综述 | 第13-20页 |
| 1.1 Rubisco活化酶的分子生物学研究 | 第13-17页 |
| 1.1.1 Rubisco活化酶的发现 | 第13页 |
| 1.1.2 Rubisco活化酶（RCA）的分子特性 | 第13-15页 |
| 1.1.2.1 Rubisco活化酶的亚基组成 | 第13-14页 |
| 1.1.2.2 Rubisco活化酶对Rubisco的活化作用 | 第14页 |
| 1.1.2.3 Rubisco活化酶的其他生理功能 | 第14-15页 |
| 1.1.3 温度响应下的Rubisco活化酶与Rubisco之间的相互关系 | 第15-16页 |
| 1.1.3.1 高温胁迫下Rubisco活化酶对Rubisco调控 | 第15-16页 |
| 1.1.3.2 Rubisco活化酶的热稳定性 | 第16页 |
| 1.1.4 Rubisco活化酶与光合作用的关系 | 第16-17页 |
| 1.1.4.1 Rubisco活化酶、Rubisco初始活力与光合速率间的内在关系 | 第16-17页 |
| 1.1.4.2 Rubisco活化酶与光合作用日变化规律 | 第17页 |
| 1.1.4.3 Rubisco活化酶基因表达植株中光合速率变化 | 第17页 |
| 1.2 嫁接对于植物生长的生理学优势 | 第17-20页 |
| 1.2.1 嫁接的定义 | 第17-18页 |
| 1.2.2 嫁接在农业生产上的优点 | 第18-20页 |
| 1.2.2.1 提高土地利用率，节约肥料施用量 | 第18页 |
| 1.2.2.2 促进生长，增加产量 | 第18页 |
| 1.2.2.3 提高抗高温性 | 第18页 |
| 1.2.2.4 增强抗冷性 | 第18页 |
| 1.2.2.5 促进对水和营养元素吸收 | 第18-19页 |
| 1.2.2.6 增强抗病性 | 第19页 |
| 1.2.2.7 增强抗虫性 | 第19页 |
| 1.2.2.8 调节作物开花期和结果期 | 第19页 |
| 1.2.2.9 改善品质 | 第19页 |
| 1.2.2.10 增加内源生长物质的供给 | 第19-20页 |
| 2 山核桃RCA基因全长克隆及序列分析 | 第20-34页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-24页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第20页 |
| 2.1.1.1 试验植物 | 第20页 |
| 2.1.1.2 载体与菌株 | 第20页 |
| 2.1.1.3 酶与试剂盒 | 第20页 |
| 2.1.1.4 生化试剂 | 第20页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第20-24页 |
| 2.1.2.1 Rubisco活化酶基因序列下载和引物设计 | 第20-21页 |
| 2.1.2.2 总RNA提取 | 第21页 |
| 2.1.2.3 反转录与c DNA第一条链合成 | 第21-22页 |
| 2.1.2.4 Rubisco活化酶基因中间片段获取 | 第22页 |
| 2.1.2.5 克隆片段连接和载体转化大肠杆菌 | 第22-23页 |
| 2.1.2.6 RACE扩增基因全长 | 第23-24页 |
| 2.1.2.7 序列比对及分析 | 第24页 |
| 2.2 结果与分析 | 第24-33页 |
| 2.2.1 山核桃叶片总RNA的提取 | 第24-25页 |
| 2.2.2 Rubisco活化酶基因中间片段获取 | 第25-26页 |
| 2.2.3 5’RACE和3’RACE | 第26-28页 |
| 2.2.4 山核桃RCA序列分析 | 第28-33页 |
| 2.3 结论与讨论 | 第33-34页 |
| 2.3.1 山核桃RCA基因的克隆 | 第33页 |
| 2.3.2 山核桃RCA基因的序列分析 | 第33-34页 |
| 3 山核桃RCA大亚基原核表达 | 第34-40页 |
| 3.1 材料与方法 | 第34-37页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第34页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第34-37页 |
| 3.2 结果与分析 | 第37-39页 |
| 3.2.1 基因编码区片段获取 | 第37页 |
| 3.2.2 构建载体双酶切验证 | 第37-38页 |
| 3.2.3 诱导条件优化 | 第38-39页 |
| 3.3 结论与讨论 | 第39-40页 |
| 4 山核桃RCA基因表达模式 | 第40-47页 |
| 4.1 材料与方法 | 第40-42页 |
| 4.1.1 试验材料及植物处理 | 第40-41页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第41-42页 |
| 4.2 结果与分析 | 第42-46页 |
| 4.2.1 RCA基因组结构获取 | 第42-43页 |
| 4.2.2 基因可变性剪切研究 | 第43-44页 |
| 4.2.3 RCA在叶发育中的作用 | 第44-45页 |
| 4.2.4 昼夜节律 | 第45-46页 |
| 4.3 结论与讨论 | 第46-47页 |
| 5 嫁接山核桃抗高温胁迫研究 | 第47-55页 |
| 5.1 材料处理与方法 | 第47-50页 |
| 5.1.1 植物材料处理 | 第47页 |
| 5.1.2 试验材料 | 第47页 |
| 5.1.3 试验方法 | 第47-50页 |
| 5.2 结果与分析 | 第50-53页 |
| 5.2.1 温度胁迫下嫁接山核桃光合速率测定 | 第50-51页 |
| 5.2.2 温度胁迫下嫁接山核桃Rubisco酶活力测定 | 第51页 |
| 5.2.3 温度胁迫下嫁接山核桃RCA基因转录水平变化 | 第51-53页 |
| 5.2.4 温度胁迫下嫁接山核桃RCA基因翻译水平变化 | 第53页 |
| 5.3 结论与讨论 | 第53-55页 |
| 6 结论与前景展望 | 第55-57页 |
| 6.1 结论 | 第55-56页 |
| 6.2 展望 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 附录 | 第62-65页 |
| 个人简介 | 第65页 |
| 导师简介 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
