致谢 | 第9-11页 |
摘要 | 第11-13页 |
abstract | 第13-15页 |
第一章 引言 | 第23-47页 |
1.1 生姜概述 | 第23-24页 |
1.1.1 铜陵白姜 | 第23-24页 |
1.1.2 生姜的营养成分 | 第24页 |
1.2 生姜的主要活性物质 | 第24-27页 |
1.2.1 挥发油 | 第24-25页 |
1.2.2 姜辣素 | 第25-26页 |
1.2.3 二苯基庚烷 | 第26页 |
1.2.4 姜黄酮 | 第26-27页 |
1.3 姜酚的提取 | 第27-29页 |
1.3.1 有机溶剂浸提法 | 第27页 |
1.3.2 超临界CO_2萃取法 | 第27-28页 |
1.3.3 微波辅助提取法 | 第28页 |
1.3.4 高压液相提取法 | 第28-29页 |
1.4 姜酚的纯化 | 第29-30页 |
1.4.1 大孔吸附树脂技术 | 第29页 |
1.4.2 干柱层析技术 | 第29-30页 |
1.4.3 高速逆流色谱技术 | 第30页 |
1.4.4 高效液相色谱技术 | 第30页 |
1.5 姜酚的生理功能 | 第30-35页 |
1.5.1 姜酚的抗氧化活性 | 第30-31页 |
1.5.2 姜酚的抑菌活性 | 第31-32页 |
1.5.3 姜酚的抗癌活性 | 第32页 |
1.5.4 姜酚的抗炎活性 | 第32-33页 |
1.5.5 姜酚的健胃止呕作用 | 第33-34页 |
1.5.6 姜酚的护心血管作用 | 第34页 |
1.5.7 姜酚的其他生物学活性 | 第34-35页 |
1.6 细胞凋亡及其机理 | 第35-41页 |
1.6.1 Death Receptor(死亡受体)凋亡通路 | 第36-37页 |
1.6.2 线粒体凋亡通路 | 第37-39页 |
1.6.3 PI3K/AKT信号通路 | 第39-40页 |
1.6.4 NF-kβ信号通路 | 第40-41页 |
1.7 本研究开展的背景及意义 | 第41-42页 |
1.8 研究内容和技术路线 | 第42-47页 |
1.8.1 研究内容 | 第42-43页 |
1.8.2 研究思路 | 第43页 |
1.8.3 技术路线图 | 第43-47页 |
第二章 铜陵白姜姜酚提取条件优化及其分离鉴定 | 第47-65页 |
2.1 材料与方法 | 第47-51页 |
2.1.1 材料 | 第47-48页 |
2.1.2 试剂及仪器 | 第48页 |
2.1.3 铜陵白姜醇提工艺流程 | 第48页 |
2.1.4 香草醛标准曲线绘制 | 第48-49页 |
2.1.5 姜酚的超声波辅助提取 | 第49页 |
2.1.6 试验设计 | 第49-50页 |
2.1.7 生姜乙醇提取粗产物的硅胶柱色谱层析 | 第50页 |
2.1.8 HSCCC高速逆流色谱技术分离姜酚 | 第50页 |
2.1.9 高效液相色谱分析HSCCC分离产物 | 第50-51页 |
2.1.10 UPLC-TOF-MS/MS分析HSCCC分离产物 | 第51页 |
2.1.11 NMR分析HSCCC分离产物 | 第51页 |
2.1.12 数据统计与分析 | 第51页 |
2.2 结果与讨论 | 第51-64页 |
2.2.1 生姜总酚含量的提取检测 | 第51-52页 |
2.2.2 单因素对铜陵白姜总酚得率的影响 | 第52-54页 |
2.2.3 响应面条件优化 | 第54-59页 |
2.2.4 姜酚的纯化 | 第59-61页 |
2.2.5 HSCCC分离组分的HPLC分析 | 第61页 |
2.2.6 HSCCC分离组分的UPLC-TOF-MS/MS分析 | 第61-64页 |
2.2.7 HSCCC分离组分的NMR分析 | 第64页 |
2.3 本章小结 | 第64-65页 |
第三章 三种姜酚的体外抗氧化活性比较 | 第65-77页 |
3.1 材料与方法 | 第65-68页 |
3.1.1 材料 | 第65页 |
3.1.2 试剂及仪器 | 第65-66页 |
3.1.3 还原能力的测定 | 第66页 |
3.1.4 DPPH自由基清除能力的测定 | 第66页 |
3.1.5 羟基自由基清除能力的测定 | 第66-67页 |
3.1.6 ABTS~+自由基清除能力的测定 | 第67页 |
3.1.7 超氧阴离子清除能力的测定 | 第67-68页 |
3.1.8 脂质抗氧化能力的测定 | 第68页 |
3.1.9 数据统计与分析 | 第68页 |
3.2 结果与讨论 | 第68-76页 |
3.2.1 三种姜酚的还原能力 | 第68-69页 |
3.2.2 姜酚对DPPH自由基的清除能力 | 第69-70页 |
3.2.3 姜酚对ABTS~+自由基的清除能力 | 第70-71页 |
3.2.4 姜酚对羟基自由基的清除能力 | 第71-72页 |
3.2.5 姜酚对超氧阴离子的清除能力 | 第72-73页 |
3.2.6 姜酚的脂质抗氧化能力 | 第73-76页 |
3.3 本章小结 | 第76-77页 |
第四章 6-姜酚诱导宫颈癌Hela细胞凋亡及其机理 | 第77-101页 |
4.1 材料与方法 | 第77-88页 |
4.1.1 材料及仪器 | 第77-78页 |
4.1.2 细胞培养 | 第78-79页 |
4.1.3 MTT实验 | 第79-80页 |
4.1.4 细胞周期检测 | 第80-81页 |
4.1.5 细胞凋亡检测 | 第81-82页 |
4.1.6 Real time PCR(RT-PCR) | 第82-86页 |
4.1.7 Western Blotting鉴定 | 第86-88页 |
4.1.8 数据统计与分析 | 第88页 |
4.2 结果与讨论 | 第88-100页 |
4.2.1 6-姜酚对Hela细胞增殖的抑制 | 第88-89页 |
4.2.2 6-姜酚诱导Hela细胞形态改变 | 第89-90页 |
4.2.3 6-姜酚诱导Hela细胞周期停滞及机理 | 第90-94页 |
4.2.4 6-姜酚诱导Hela细胞凋亡及机理 | 第94-100页 |
4.3 本章小结 | 第100-101页 |
第五章 10-姜酚诱导宫颈癌Hela细胞凋亡及其机理 | 第101-116页 |
5.1 材料与方法 | 第101-104页 |
5.1.1 材料及仪器 | 第101页 |
5.1.2 细胞培养 | 第101页 |
5.1.3 MTT实验 | 第101-102页 |
5.1.4 细胞周期检测 | 第102页 |
5.1.5 细胞凋亡检测 | 第102页 |
5.1.6 Real time PCR(RT-PCR) | 第102页 |
5.1.7 Western Blotting鉴定 | 第102页 |
5.1.8 数据统计与分析 | 第102-104页 |
5.2 结果与讨论 | 第104-114页 |
5.2.1 10-姜酚对Hela细胞增殖的抑制及毒性检测 | 第104-105页 |
5.2.2 10-姜酚诱导Hela细胞形态改变 | 第105-106页 |
5.2.3 10-姜酚诱导Hela细胞周期停滞及机理 | 第106-109页 |
5.2.4 10-姜酚诱导Hela细胞凋亡及机理 | 第109-114页 |
5.3 本章小结 | 第114-116页 |
第六章 姜酚同系物对宫颈癌Hela细胞的协同抑制作用 | 第116-129页 |
6.1 材料与方法 | 第116-119页 |
6.1.1 材料及仪器 | 第116页 |
6.1.2 细胞培养 | 第116-117页 |
6.1.3 CCK-8实验 | 第117-118页 |
6.1.4 联合用药组合 | 第118页 |
6.1.5 计算联合用药的协同指数(CI) | 第118-119页 |
6.1.6 数据统计与分析 | 第119页 |
6.2 结果与讨论 | 第119-127页 |
6.2.1 8-姜酚对Hela细胞增殖的抑制 | 第119-120页 |
6.2.2 6-姜酚和10-姜酚联用对Hela细胞增殖的协同抑制 | 第120-121页 |
6.2.3 6-姜酚和8-姜酚联用对Hela细胞增殖的协同抑制 | 第121-122页 |
6.2.4 8-姜酚和10-姜酚联用对Hela细胞增殖的协同抑制 | 第122-123页 |
6.2.5 6-姜酚与5-FU联用对Hela细胞增殖的协同抑制 | 第123-124页 |
6.2.6 6-姜酚与紫杉醇联用对Hela细胞增殖的协同抑制 | 第124-126页 |
6.2.7 10-姜酚与5-FU联用对Hela细胞增殖的协同抑制 | 第126页 |
6.2.8 10-姜酚与紫杉醇联用对Hela细胞增殖的协同抑制 | 第126-127页 |
6.3 本章小结 | 第127-129页 |
第七章 总结与展望 | 第129-132页 |
7.1 总结 | 第129-130页 |
7.2 创新点 | 第130页 |
7.3 展望 | 第130-132页 |
参考文献 | 第132-150页 |
攻读博士学位期间的学术活动及成果情况 | 第150页 |