| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 英文缩略词 | 第12-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-44页 |
| 综述一 神经病理性疼痛的国内外研究现状 | 第13-26页 |
| 1 痛觉的解剖和生理学基础 | 第13-14页 |
| 2 神经病理性疼痛的发病机制 | 第14-18页 |
| 2.1 外周机制 | 第14-17页 |
| 2.2 中枢机制 | 第17-18页 |
| 3 神经病理性疼痛的临床表现 | 第18-20页 |
| 3.1 神经病理性疼痛的性质和特点 | 第18页 |
| 3.2 神经病理性疼痛常见伴随症状 | 第18-20页 |
| 4 神经病理性疼痛的治疗 | 第20-26页 |
| 4.1 药物治疗 | 第20-23页 |
| 4.2 非药物治疗 | 第23-26页 |
| 5 小结 | 第26页 |
| 综述二 IL-6在神经病理性疼痛领域的研究进展 | 第26-29页 |
| 1 IL-6的结构特征及表达分布 | 第26-27页 |
| 2 IL-6能够促进痛觉敏化的产生 | 第27页 |
| 3 IL-6在神经病理痛中的作用 | 第27-29页 |
| 4 小结 | 第29页 |
| 综述三 SOCS3参与调节神经病理性疼痛的研究进展 | 第29-33页 |
| 1 SOCS3的分布及结构特征 | 第29-30页 |
| 2 SOCS3对于JAK/STAT3信号通路有负反馈调节作用 | 第30页 |
| 3 SOCS3能够抑制神经病理性疼痛的发生与发展 | 第30-31页 |
| 4 SOCS3调控细胞因子表达促进神经病理性疼痛的恢复 | 第31-32页 |
| 5 小结 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-44页 |
| 第二部分 实验研究 | 第44-61页 |
| 前言 | 第44-45页 |
| 实验一 拨法对CCI大鼠行为学及形态学的影响研究 | 第45-50页 |
| 1 材料与方法 | 第45-49页 |
| 1.1 实验动物 | 第45页 |
| 1.2 动物分组 | 第45页 |
| 1.3 主要仪器与器具 | 第45页 |
| 1.4 主要试剂 | 第45-46页 |
| 1.5 造模方法 | 第46页 |
| 1.6 干预方法 | 第46-47页 |
| 1.7 光热耐痛阈实验 | 第47页 |
| 1.8 组织样本制备 | 第47-48页 |
| 1.9 数据记录与统计 | 第48-49页 |
| 2 实验结果 | 第49-50页 |
| 2.1 行为学结果 | 第49-50页 |
| 2.2 形态学结果 | 第50页 |
| 实验二 拨法对CCI大鼠体内促炎性因子IL-6及抗炎保护因子SOCS3的影响 | 第50-61页 |
| 1 材料与方法 | 第50-56页 |
| 1.1 实验动物 | 第50页 |
| 1.2 动物分组 | 第50-51页 |
| 1.3 主要仪器与器具 | 第51页 |
| 1.4 主要试剂 | 第51-52页 |
| 1.5 造模方法 | 第52页 |
| 1.6 干预方法 | 第52-53页 |
| 1.7 组织样本制备 | 第53-54页 |
| 1.8 检测方法 | 第54-56页 |
| 1.9 分析与统计 | 第56页 |
| 2 实验结果 | 第56-61页 |
| 2.1 酶联免疫吸附试验结果 | 第56-57页 |
| 2.2 IL-6免疫组化染色结果 | 第57-58页 |
| 2.3 SOCS3免疫组化染色结果 | 第58-59页 |
| 2.4 Western Blot结果 | 第59-61页 |
| 讨论 | 第61-65页 |
| 1 CCI模型能够准确的模拟神经病理性疼痛 | 第61-62页 |
| 2 拨法能够有效缓解机体痛觉敏化 | 第62页 |
| 3 拨法能够通过抑制IL-6的释放起到止痛作用 | 第62-63页 |
| 4 拨法能够通过上调SOCS3的表达抑制痛觉传导 | 第63-64页 |
| 5 不足与展望 | 第64-65页 |
| 实验结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-67页 |
| 附录 | 第67-70页 |
| 附录1 大鼠术侧坐骨神经HE染色结果 | 第67-68页 |
| 附录2 大鼠脊髓中IL-6免疫组化染色结果 | 第68-69页 |
| 附录3 大鼠脊髓中SOCS3免疫组化染色结果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 在学期间主要研究成果 | 第71-73页 |
| 个人简历 | 第73页 |
