| 英文缩略词 | 第7-8页 |
| 中文摘要 | 第8-14页 |
| 英文摘要 | 第14-21页 |
| 前言 | 第22-25页 |
| 第一部分 miR-184 在胰腺导管细胞癌组织中表达及其与临床病理、预后相关性的研究 | 第25-37页 |
| 引言 | 第25-26页 |
| 材料与方法 | 第26-31页 |
| 1、实验材料 | 第26-27页 |
| 2、纳入研究患者临床数据资料 | 第27页 |
| 3、胰腺导管癌组织和癌旁正常组织的留取 | 第27-28页 |
| 4、RT-PCR检测miR-184 表达 | 第28-30页 |
| 5、苏木紫伊红染色法整个染色过程如下 | 第30-31页 |
| 6、统计学分析 | 第31页 |
| 结果 | 第31-34页 |
| 1、胰腺导管癌病理形态观察 | 第31-32页 |
| 2、胰腺导管癌、正常组织中mi R-184 表达水平 | 第32-33页 |
| 3、胰腺导管癌组织中miR-184 表达水平与患者预后之间相关性分析结果 | 第33-34页 |
| 讨论 | 第34-37页 |
| 第二部分 miR-184 对胰腺导管癌CFPAC-1 细胞生长、侵袭、凋亡和细胞周期的影响 | 第37-53页 |
| 引言 | 第37-38页 |
| 材料与方法 | 第38-42页 |
| 1、实验材料 | 第38-39页 |
| 2、细胞培养与细胞转染 | 第39-40页 |
| 3、流式细胞术检测转染效率 | 第40页 |
| 4、RT- PCR检测抑制剂对CFPAC-1 细胞中mi R-184 表达的抑制效应 | 第40页 |
| 5、RT- PCR检测miR-184 在胰腺细胞系中的表达 | 第40页 |
| 6、细胞划痕实验 | 第40-41页 |
| 7、Transwell侵袭实验 | 第41页 |
| 8、Annexin V与PI法检测细胞凋亡 | 第41页 |
| 9、流式细胞术检测细胞周期 | 第41-42页 |
| 10、裸鼠皮下成瘤实验 | 第42页 |
| 11、统计学分析 | 第42页 |
| 结果 | 第42-49页 |
| 讨论 | 第49-53页 |
| 第三部分 miR-184 调节胰腺导管癌细胞凋亡的机制研究 | 第53-67页 |
| 引言 | 第53-54页 |
| 材料与方法 | 第54-58页 |
| 1、实验材料 | 第54-55页 |
| 2、抑制剂抑制mi R-184 过表达的CFPAC-1 细胞 | 第55页 |
| 3、Western bloting检测过表达mi R-184 的CFPAC-1 细胞、正常CFPAC-1 细胞及低表达miR-184 细胞相关蛋白的表达 | 第55-58页 |
| 4、统计学分析 | 第58页 |
| 结果 | 第58-64页 |
| 讨论 | 第64-67页 |
| 总结 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-83页 |
| 附录 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 综述 | 第85-93页 |
| 参考文献 | 第90-93页 |
