E.tenella IgY壳聚糖—海藻酸钠—微孔淀粉微胶囊的制备
摘要 | 第1-9页 |
前言 | 第9-10页 |
文献综述 | 第10-16页 |
1 鸡球虫病的研究进展 | 第10页 |
·柔嫩艾美耳球虫 | 第10页 |
·鸡球虫病的防治 | 第10页 |
2 IgY研究进展 | 第10-12页 |
·IgY的形成及结构特点 | 第10-11页 |
·IgY的提取方法 | 第11-12页 |
3 微胶囊技术 | 第12-15页 |
·微胶囊简介 | 第12-13页 |
·微胶囊壁材的种类 | 第13-14页 |
·壳聚糖和海藻酸钠微胶囊化原理 | 第14-15页 |
4 课题的提出 | 第15-16页 |
第一章 E.tenella间接ELISA检测方法 | 第16-27页 |
1 实验材料及设备 | 第16-17页 |
2 实验方法 | 第17-19页 |
·可溶性抗原的制备 | 第17页 |
·阴阳性血清的制备 | 第17页 |
·间接ELISA检测方法的各种条件 | 第17-19页 |
·酶标板均一性测定 | 第17页 |
·间接ELISA检测方法 | 第17-19页 |
·阴、阳性临界值的确定 | 第19页 |
·间接ELISA的敏感性试验 | 第19页 |
·双抗体夹心ELISA标准曲线的绘制 | 第19页 |
3 结果与分析 | 第19-25页 |
·可溶性抗原的制备 | 第19页 |
·间接ELISA检测方法 | 第19-24页 |
·酶标板均一性测定 | 第19-20页 |
·间接ELISA方法各项实验条件 | 第20-24页 |
·阴、阳性临界值的确定 | 第24页 |
·间接ELISA敏感性试验结果 | 第24页 |
·标准曲线的绘制 | 第24-25页 |
4 讨论 | 第25-26页 |
·最佳一抗作用时间的确定 | 第25页 |
·包被抗原浓度的确定 | 第25页 |
·最佳酶标抗体稀释倍数 | 第25页 |
·间接ELISA检测方法的敏感性 | 第25-26页 |
5 结论 | 第26-27页 |
第二章 E.tenella特异性卵黄抗体的制备 | 第27-35页 |
1 材料及仪器 | 第27-28页 |
2 试验方法 | 第28-31页 |
·高免蛋及卵黄液的收集 | 第28页 |
·IgY分离、提取和纯化 | 第28-29页 |
·抗体含量测定 | 第29-31页 |
3 结果与分析 | 第31-33页 |
·纯化前卵黄中特异性IgY含量 | 第31-32页 |
·卵黄抗体IgY的分离、提取和纯化 | 第32-33页 |
·卵黄抗体IgY的分离 | 第32页 |
·辛酸-冷乙醇法对IgY进行提纯 | 第32页 |
·亲和层析纯化IgY | 第32-33页 |
4 讨论 | 第33-34页 |
5 结论 | 第34-35页 |
第三章 壳聚糖-海藻酸钠-微孔淀粉微胶囊的制备 | 第35-48页 |
1 实验试剂与仪器 | 第35页 |
2 实验方法 | 第35-37页 |
·溶液的配制 | 第35页 |
·测定空白微球的溶胀率 | 第35页 |
·微胶囊的制备 | 第35-36页 |
·壁材配比变化对微胶囊性能的影响 | 第36-37页 |
·微胶囊性能的测定指标 | 第36页 |
·海藻酸钠含量的影响 | 第36页 |
·壳聚糖含量的影响 | 第36页 |
·CaCl_2含量的影响 | 第36页 |
·抗体含量的影响 | 第36页 |
·微孔淀粉含量的影响 | 第36-37页 |
3 微囊化对IgY性能的影响 | 第37页 |
·模拟胃液对抗体的影响 | 第37页 |
·IgY微胶囊的体外释放试验 | 第37页 |
4 结果与分析 | 第37-46页 |
·空白微球的溶胀率及处理形态 | 第37-39页 |
·海藻酸钠含量对微囊性能的影响 | 第39-40页 |
·壳聚糖含量对微囊性能的影响 | 第40-41页 |
·CaCl_2含量对微囊性能的影响 | 第41-43页 |
·投药量对微囊性能的影响 | 第43-44页 |
·微孔淀粉含量对微囊性能的影响 | 第44-45页 |
·模拟胃液对抗体的影响 | 第45-46页 |
5 讨论 | 第46-47页 |
·空白微球溶胀率的测定 | 第46页 |
·各组分对微囊性能的影响 | 第46-47页 |
6 结论 | 第47-48页 |
全文结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-54页 |
Abstract | 第54-56页 |
致谢 | 第56页 |