| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 縮略语表 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-25页 |
| 1 植物花器官发育的研究进展 | 第15-18页 |
| ·植物花器官发育的分子生物学研究 | 第15页 |
| ·植物花器官发育的几种经典模型 | 第15-16页 |
| ·植物花器官发育相关基因的研究 | 第16-17页 |
| ·植物花器官发育相关基因与雄蕊瓣化的关系 | 第17-18页 |
| 2 利用突变体研究基因功能的现状 | 第18-19页 |
| 3 基因差异显示方法及cDNA-AFLP技术的应用 | 第19-21页 |
| ·cDNA-AFLP技术的原理和实验流程 | 第19-20页 |
| ·cDNA-AFLP技术的优点和缺点 | 第20页 |
| ·cDNA-AFLP技术在植物表达分析中的应用 | 第20-21页 |
| 4 实时荧光定量PCR技术及其在植物研究中的应用 | 第21-23页 |
| ·实时荧光定量PCR技术概况 | 第21-22页 |
| ·实时荧光定量PCR技术原理及用途 | 第22页 |
| ·实时荧光定量PCR解析方法 | 第22-23页 |
| 5 研究的目的、意义及内容 | 第23-25页 |
| ·研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| ·实验研究内容 | 第24-25页 |
| 第二章 雄蕊瓣化系与保持系生理特性的差异分析 | 第25-33页 |
| 摘要 | 第25页 |
| ABSTRACT | 第25-26页 |
| 1 材料与方法 | 第26-27页 |
| ·试验材料 | 第26页 |
| ·试验方法 | 第26-27页 |
| ·数据处理分析 | 第27页 |
| 2 结果与分析 | 第27-30页 |
| ·不结球白菜初花期各器官中可溶性糖含量的变化 | 第27页 |
| ·不结球白菜初花期各器官中可溶性蛋白质含量的变化 | 第27-28页 |
| ·不结球白菜初花期各器官中脯氨酸含量的变化 | 第28-29页 |
| ·不结球白菜初花期各器官中SOD活性的变化 | 第29页 |
| ·不结球白菜初花期各器官中POD活性的变化 | 第29-30页 |
| ·不结球白菜初花期各器官中CAT活性的变化 | 第30页 |
| 3 讨论 | 第30-33页 |
| 第三章 雄蕊瓣化系与保持系基因差异表达的cDNA-AFLP分析 | 第33-49页 |
| 摘要 | 第33页 |
| ABSTRACT | 第33-35页 |
| 1 材料 | 第35-36页 |
| ·试验材料 | 第35页 |
| ·主要仪器、设备 | 第35页 |
| ·主要试剂 | 第35页 |
| ·所用接头和引物 | 第35-36页 |
| 2 方法 | 第36-43页 |
| ·植物总RNA的提取与检测 | 第36-38页 |
| ·无RNase、无菌环境的创造 | 第36-37页 |
| ·植物总RNA的提取 | 第37页 |
| ·样品总RNA的检测 | 第37-38页 |
| ·双链cDNA的合成与纯化 | 第38-39页 |
| ·第一链cDNA的合成 | 第38页 |
| ·第二链cDNA的合成 | 第38-39页 |
| ·双链cDNA的纯化及检测 | 第39页 |
| ·双链cDNA片段的酶切和与特定人工接头的连接 | 第39-40页 |
| ·双链cDNA片段的酶切 | 第39-40页 |
| ·与特定人工接头的连接 | 第40页 |
| ·酶切片段的预扩增和选择性扩增 | 第40-41页 |
| ·酶切片段的预扩增 | 第40-41页 |
| ·预扩增产物的选择性扩增 | 第41页 |
| ·PCR扩增产物聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第41-43页 |
| ·电泳玻璃板的准备及组装 | 第41-42页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶的制备及灌胶 | 第42页 |
| ·扩增产物凝胶电泳 | 第42页 |
| ·银染显色 | 第42-43页 |
| 3 结果与分析 | 第43-46页 |
| ·总RNA的提取 | 第43-44页 |
| ·链cDNA的质量 | 第44页 |
| ·预扩增 | 第44-45页 |
| ·选择性扩增 | 第45页 |
| ·部分选择性扩增产物聚丙烯酰胺凝胶图谱 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46-49页 |
| 第四章 雄蕊瓣化相关基因的qRT-PCR分析 | 第49-65页 |
| 摘要 | 第49页 |
| ABSTRACT | 第49-51页 |
| 1 材料 | 第51页 |
| ·试验材料 | 第51页 |
| ·主要仪器、设备 | 第51页 |
| ·主要试剂 | 第51页 |
| 2 方法 | 第51-56页 |
| ·差异片段的回收、克隆和测序 | 第51-55页 |
| ·差异片段的分离 | 第51-52页 |
| ·差异片段的二次PCR扩增 | 第52页 |
| ·二次扩增产物的回收 | 第52-53页 |
| ·目的片段与PMD 18-T Vector的连接 | 第53页 |
| ·大肠杆菌DH5a感受态的制备 | 第53-54页 |
| ·连接产物的转化 | 第54页 |
| ·阳性克隆鉴定及菌液测序 | 第54-55页 |
| ·差异片段核酸序列的生物信息学分析 | 第55页 |
| ·雄蕊瓣化相关基因片段的qRT-PCR分析 | 第55-56页 |
| ·植物总RNA提取 | 第55页 |
| ·单链cDNA合成 | 第55-56页 |
| ·差异基因的qRT-PCR分析 | 第56页 |
| ·乙烯释放量及ACC合酶、ACC氧化酶活性的测定 | 第56页 |
| 3 结果与分析 | 第56-64页 |
| ·二次PCR扩增产物的回收 | 第56-57页 |
| ·阳性克隆的鉴定 | 第57-58页 |
| ·差异片段核酸序列的生物信息学分析 | 第58-60页 |
| ·目的基因定量表达结果 | 第60-62页 |
| ·差异片段ERFB001在根中的表达分析 | 第60页 |
| ·差异片段ERFB001在茎中的表达分析 | 第60-61页 |
| ·差异片段ERFB001在叶中的表达分析 | 第61-62页 |
| ·差异片段ERFB001在叶片、小蕾、大蕾和花中的表达分析 | 第62页 |
| ·初花期各器官中乙烯释放量的变化 | 第62-63页 |
| ·初花期各器官中ACC合酶活性的变化 | 第63页 |
| ·初花期各器官中ACC氧化酶活性的变化 | 第63-64页 |
| 4 讨论 | 第64-65页 |
| 全文结论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-77页 |
| 附录 | 第77-79页 |
| 研究成果 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
