| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 缩略语表 | 第13-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-25页 |
| ·鲢的生物学特性及育种研究 | 第14-15页 |
| ·细胞骨架蛋白 | 第15-18页 |
| ·细胞骨架蛋白介绍 | 第15-17页 |
| ·外界环境应激对细胞骨架蛋白的影响 | 第17-18页 |
| ·热休克蛋白 | 第18-21页 |
| ·热休克蛋白简介 | 第18-19页 |
| ·环境应激对鱼类热休克蛋白70的影响 | 第19-21页 |
| ·低氧对鱼类的影响 | 第21-22页 |
| ·技术路线 | 第22-23页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第23-25页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·实验仪器 | 第23-24页 |
| ·研究目的及意义 | 第24-25页 |
| 第二章 鲢两个微管蛋白基因全长的克隆及表达分析 | 第25-43页 |
| ·材料与方法 | 第26-28页 |
| ·实验材料 | 第26页 |
| ·组织中总RNA的提取 | 第26-27页 |
| ·总RNA反转录 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-32页 |
| ·DM-domain区扩增 | 第28-29页 |
| ·鲢TUB84和TUBA2基因全长扩增 | 第29页 |
| ·PCR产物回收 | 第29-32页 |
| ·结果与分析 | 第32-40页 |
| ·鲢TUB84和TUBA2基因的生物信息学分析 | 第32-36页 |
| ·TUB84和TUBA2的基因表达分布 | 第36-37页 |
| ·低氧胁迫下TUBA2和TUB84的mRNA表达变化分析 | 第37-40页 |
| ·讨论 | 第40-43页 |
| 第三章 鲢诱导型HSP70cDNA的克隆及表达分析 | 第43-55页 |
| ·材料与方法 | 第44-46页 |
| ·材料 | 第44页 |
| ·总RNA的提取 | 第44页 |
| ·酚氯仿法提取DNA | 第44-45页 |
| ·DNA纯度检测 | 第45页 |
| ·引物设计 | 第45-46页 |
| ·方法 | 第46-48页 |
| ·鲢HSP70基因全长扩增 | 第46-47页 |
| ·序列分析和同源性比较 | 第47页 |
| ·HSP70基因翻译区有无内含子的检验 | 第47页 |
| ·半定量RT-PCR检测HSP70 mRNA的表达分布 | 第47-48页 |
| ·结果与分析 | 第48-53页 |
| ·鲢HSP70cDNA全长及序列分析 | 第48页 |
| ·氨基酸序列比对及系统进化树分析 | 第48-50页 |
| ·鲢HSP70基因翻译区有无内含子的检测结果 | 第50-51页 |
| ·HSP70 mRNA在鲢各组织中的表达 | 第51页 |
| ·低氧胁迫下鲢HSP70mRNA在各组织中的表达变化 | 第51-53页 |
| ·讨论 | 第53-55页 |
| ·鲢HSP70cDNA的克隆及序列分析 | 第53页 |
| ·鲢HSP70cDNA内含子的验证及组织分布 | 第53-54页 |
| ·低氧胁迫下鲢HSP70cDNA在各组织中的表达 | 第54-55页 |
| 第四章 低氧胁迫下两种热休克蛋白70的表达变化 | 第55-65页 |
| ·材料与方法 | 第56-58页 |
| ·材料 | 第56页 |
| ·ELISA检测低氧胁迫下HSP70和HSC70的蛋白表达 | 第56-58页 |
| ·结果与分析 | 第58-62页 |
| ·低氧胁迫下HSC70和HSP70在鲢心脏中的表达变化 | 第58页 |
| ·低氧胁迫下HSC70和HSP70在鲢脑中的表达变化 | 第58-59页 |
| ·低氧胁迫下HSC70和HSP70在鲢肝脏中的表达变化 | 第59页 |
| ·低氧胁迫下HSC70和HSP70在鲢脾中的表达变化 | 第59-60页 |
| ·低氧胁迫下HSC70和HSP70在鲢肾中的表达变化 | 第60-61页 |
| ·低氧胁迫下HSC70和HSP70在鲢肌肉中的表达变化 | 第61页 |
| ·鲢窒息后拯救过程中脑中HSP70的表达变化 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 硕士期间发表的主要论文 | 第74-75页 |
| 附录 | 第75页 |
