| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 第1章 国内外研究进展 | 第9-19页 |
| ·盐胁迫对植物的主要表现形式 | 第9-11页 |
| ·盐胁迫引起植物细胞离子失调 | 第9-10页 |
| ·盐胁迫引起植物细胞吸水困难 | 第10页 |
| ·盐胁迫引起植物生理代谢紊乱 | 第10-11页 |
| ·植物耐盐机理研究 | 第11-12页 |
| ·盐胁迫下植物渗透机制的调节 | 第11页 |
| ·盐胁迫下离子的区隔化 | 第11-12页 |
| ·盐分可增加质膜的通透性 | 第12页 |
| ·耐盐相关基因的克隆 | 第12-15页 |
| ·耐盐相关基因的分类 | 第12-15页 |
| ·渗透调节有关的基因 | 第12-13页 |
| ·脯氨酸合成相关基因 | 第13页 |
| ·甜菜碱合成相关基因 | 第13-14页 |
| ·与离子区隔化相关的基因 | 第14-15页 |
| ·保护酶基因 | 第15页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第15-19页 |
| 第2章 盐胁迫下对骆驼刺部分生理生化指标变化的影响 | 第19-27页 |
| ·材料及方法 | 第19-21页 |
| ·实验材料 | 第19页 |
| ·胁迫处理 | 第19页 |
| ·MDA 的测定方法 | 第19-20页 |
| ·SOD、POD、CAT 的测定 | 第20页 |
| ·酶液提取 | 第20页 |
| ·SOD 活性测定 | 第20页 |
| ·POD 活性测定 | 第20页 |
| ·CAT 活性测定 | 第20页 |
| ·脯氨酸含量的测定 | 第20-21页 |
| ·结果与分析 | 第21-25页 |
| ·MDA 测定结果 | 第21-22页 |
| ·盐胁迫对骆驼刺不同器官 SOD 活性的影响 | 第22-23页 |
| ·盐胁迫对骆驼刺不同器官 POD 活性的影响 | 第23页 |
| ·盐胁迫对骆驼刺不同器官 CAT 活性的影响 | 第23-24页 |
| ·脯氨酸含量变化 | 第24-25页 |
| ·讨论 | 第25-26页 |
| ·小结 | 第26-27页 |
| 第3章 疏叶骆驼刺耐盐基因 AsNHX 的 3′-RACE 克隆及序列分析 | 第27-42页 |
| ·材料与方法 | 第27-32页 |
| ·植物材料 | 第27页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第27页 |
| ·骆驼刺总 RNA 提取方法筛选 | 第27-29页 |
| ·Trizol 法提取 RNA | 第27-28页 |
| ·CTAB 法 | 第28页 |
| ·热硼酸法 | 第28-29页 |
| ·总 RNA 样品纯度、浓度及完整性检测 | 第29页 |
| ·电泳分析 | 第29页 |
| ·RNA 样品紫外分光光度计检验纯度 | 第29页 |
| ·疏叶骆驼刺 AsNHX 基因 cDNA 核心片段的克隆 | 第29-31页 |
| ·RT-PCR 及凝胶回收 | 第29-30页 |
| ·连接、转化、筛选和测序 | 第30-31页 |
| ·3′-RACE 扩增及序列测定 | 第31页 |
| ·疏叶骆驼刺 AsNHX 基因 3′末端序列分析 | 第31-32页 |
| ·结果与分析 | 第32-39页 |
| ·骆驼刺总 RNA 提取方法的筛选 | 第32-33页 |
| ·凝胶电泳分析 | 第32-33页 |
| ·总 RNA 含量和纯度分析 | 第33页 |
| ·骆驼刺 As-NHX 基因的 cDNA 核心片段的 PCR 扩增 | 第33-34页 |
| ·单链 cDNA 的测序结果 | 第34-36页 |
| ·疏叶骆驼刺 AsNHX1 基因 3′末端的序列分析 | 第36-39页 |
| ·疏叶骆驼刺 AsNHX 基因 3′末端的氨基酸序列分析 | 第36-39页 |
| ·讨论 | 第39-40页 |
| ·小结 | 第40-42页 |
| 常用缩略语中英文对照表 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 作者简历 | 第48页 |
| 发表论文 | 第48页 |
