植入式神经电极的应用基础研究
| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-20页 |
| 第一章 绪论 | 第20-63页 |
| 1.植入式神经假体的研究意义 | 第20-21页 |
| 2.植入式神经假体的发展和挑战 | 第21-26页 |
| ·植入式神经假体的发展 | 第21-23页 |
| ·植入式神经假体的结构和原理 | 第23-24页 |
| ·植入式神经假体遇到的挑战 | 第24-26页 |
| 3.植入式神经电极 | 第26-47页 |
| ·植入式神经电极和神经界面 | 第26-29页 |
| ·植入式神经电极的结构和用途 | 第29-34页 |
| ·植入式神经电极界面的电荷传递 | 第34-38页 |
| ·电容性机理 | 第34-36页 |
| ·法拉第机理 | 第36-38页 |
| ·植入式神经电极遇到的问题和解决方案 | 第38-47页 |
| ·电极的电化学问题 | 第39-44页 |
| ·电极的生物相容性问题 | 第44-47页 |
| 4.本文的研究目的和内容 | 第47-50页 |
| 参考文献 | 第50-63页 |
| 第二章 活化氧化铱电极的制备和表征 | 第63-98页 |
| 1.引言 | 第63-65页 |
| 2.实验部分 | 第65-74页 |
| ·实验主要试剂和仪器 | 第65-66页 |
| ·实验的前期准备 | 第66-68页 |
| ·铱电极的制备 | 第66页 |
| ·活化溶液的选择 | 第66-67页 |
| ·电位窗口的确定 | 第67-68页 |
| ·铱电极的活化 | 第68-69页 |
| ·电位对活化氧化铱的影响 | 第68页 |
| ·频率对活化氧化铱的影响 | 第68页 |
| ·时间对活化氧化铱的影响 | 第68页 |
| ·浓度对活化氧化铱的影响 | 第68页 |
| ·波形对活化氧化铱的影响 | 第68-69页 |
| ·循环伏安测试 | 第69页 |
| ·最大安全注入电荷密度 | 第69-72页 |
| ·电化学交流阻抗测试 | 第72页 |
| ·扫描电子显微镜镜 | 第72页 |
| ·电极的稳定性 | 第72页 |
| ·氧化铱电极的pH响应 | 第72-74页 |
| 3 结果和讨论 | 第74-93页 |
| ·活化条件对电极性能的影响 | 第74-78页 |
| ·电位对活化氧化铱的影响 | 第74页 |
| ·频率对活化氧化铱的影响 | 第74-75页 |
| ·时间对活化氧化铱的影响 | 第75-76页 |
| ·浓度对活化氧化铱的影响 | 第76-77页 |
| ·波型对活化氧化铱的影响 | 第77-78页 |
| ·氧化铱电极的循环伏安曲线 | 第78-80页 |
| ·氧化铱电极的最大安全注入电荷密度 | 第80-83页 |
| ·电化学交流阻抗 | 第83-88页 |
| ·扫描电子显微镜表征 | 第88-89页 |
| ·氧化铱的pH响应 | 第89-91页 |
| ·氧化铱电极的稳定性 | 第91-93页 |
| 4.本章小结 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-98页 |
| 第三章 电沉积氧化铱电极的制备和表征 | 第98-134页 |
| 1.引言 | 第98-100页 |
| 2.实验部分 | 第100-107页 |
| ·实验主要试剂和仪器 | 第100-101页 |
| ·实验的前期准备 | 第101-103页 |
| ·铂电极的制备 | 第101页 |
| ·电沉积溶液的配制 | 第101-102页 |
| ·沉积氧化铱的电位窗口 | 第102-103页 |
| ·氧化铱的电沉积 | 第103-104页 |
| ·铂电极上的氧化铱沉积 | 第103页 |
| ·多孔铂上的氧化铱沉积 | 第103-104页 |
| ·其它基体上的氧化铱沉积 | 第104页 |
| ·紫外—可见吸收光谱分析 | 第104页 |
| ·X射线衍射分析 | 第104页 |
| ·X射线能谱分析 | 第104-105页 |
| ·循环伏安测试 | 第105页 |
| ·最大安全注入电荷密度 | 第105页 |
| ·电化学交流阻抗测试 | 第105页 |
| ·扫描电子显微镜镜 | 第105页 |
| ·电极的稳定性 | 第105-106页 |
| ·氧化铱电极的pH响应 | 第106-107页 |
| 3.结果和讨论 | 第107-130页 |
| ·紫外—可见吸收光谱分析 | 第107-108页 |
| ·X射线衍射分析 | 第108页 |
| ·X射线光电子能谱分析 | 第108-109页 |
| ·铂电极上电沉积氧化铱的性能分析 | 第109-119页 |
| ·循环伏安曲线 | 第109-111页 |
| ·最大安全注入电荷密度 | 第111-112页 |
| ·电化学交流阻抗分析 | 第112-116页 |
| ·扫描电子显微镜 | 第116-117页 |
| ·电极的pH响应 | 第117-118页 |
| ·电极的稳定性 | 第118-119页 |
| ·多孔铂上电沉积氧化铱的性能分析 | 第119-125页 |
| ·循环伏安曲线 | 第119-120页 |
| ·最大安全注入电荷密度 | 第120-121页 |
| ·电化学交流阻抗 | 第121-124页 |
| ·扫描电子显微镜 | 第124-125页 |
| ·其它基体上电沉积的氧化铱 | 第125-130页 |
| ·循环伏安曲线 | 第125-126页 |
| ·电化学交流阻抗 | 第126-129页 |
| ·其它基体上的电沉积 | 第129-130页 |
| 4.本章小结 | 第130-131页 |
| 参考文献 | 第131-134页 |
| 第四章 基于碳纳米管的电极的制备和表征 | 第134-174页 |
| 1.引言 | 第134-136页 |
| 2.实验部分 | 第136-146页 |
| ·实验主要试剂和仪器 | 第136-138页 |
| ·实验的前期准备 | 第138-139页 |
| ·铂电极的制备 | 第138页 |
| ·生物实验样品准备 | 第138-139页 |
| ·碳纳米管的官能团化 | 第139页 |
| ·碳纳米管的羧基化 | 第139页 |
| ·碳纳米管的氨基化 | 第139页 |
| ·碳纳米管的红外分析 | 第139页 |
| ·碳纳米管的电沉积 | 第139-141页 |
| ·羧基化碳纳米管的电沉积 | 第139-140页 |
| ·氨基化碳纳米管的电沉积 | 第140页 |
| ·碳纳米管和导电聚合物的共沉积 | 第140-141页 |
| ·循环伏安测试 | 第141-142页 |
| ·最大安全注入电荷密度 | 第142页 |
| ·电化学交流阻抗测试 | 第142页 |
| ·扫描电子显微镜 | 第142页 |
| ·电极的电化学稳定性 | 第142页 |
| ·细胞培养实验 | 第142-144页 |
| ·细胞培养 | 第142-143页 |
| ·扫描电子显微镜观察 | 第143页 |
| ·荧光染色观察 | 第143-144页 |
| ·免疫组化实验 | 第144-146页 |
| ·植入手术 | 第144页 |
| ·免疫组化实验 | 第144页 |
| ·统计学分析 | 第144-146页 |
| 3. 结果和讨论 | 第146-168页 |
| ·羧基化碳纳米管的电沉积 | 第146-147页 |
| ·季铵化碳纳米管的电沉积 | 第147-154页 |
| ·碳纳米管的季铵化 | 第147-148页 |
| ·循环伏安测试 | 第148-149页 |
| ·最大安全注入电荷密度 | 第149页 |
| ·电化学交流阻抗 | 第149-152页 |
| ·扫描电镜照片 | 第152-153页 |
| ·电化学稳定性 | 第153-154页 |
| ·导电聚合物/碳纳米管复合电极 | 第154-168页 |
| ·电沉积过程 | 第154页 |
| ·循环伏安测试 | 第154-155页 |
| ·电化学阻抗 | 第155-159页 |
| ·最大安全注入电荷密度 | 第159-160页 |
| ·扫描电子显微镜照片 | 第160-161页 |
| ·稳定性 | 第161-163页 |
| ·PC12细胞培养 | 第163-166页 |
| ·免疫组化 | 第166-168页 |
| 4.结论 | 第168-169页 |
| 参考文献 | 第169-174页 |
| 第五章 聚乙烯醇/聚丙烯酸修饰材料 | 第174-201页 |
| 1.引言 | 第174-176页 |
| 2.实验部分 | 第176-185页 |
| ·实验主要试剂和仪器 | 第176-177页 |
| ·实验的前期准备 | 第177-178页 |
| ·氧化铱电极的制备 | 第178页 |
| ·生物实验样品准备 | 第178页 |
| ·PVA/PAA的合成 | 第178-179页 |
| ·PVA/PAA的红外分析 | 第179页 |
| ·PVA/PAA的溶胀率 | 第179-180页 |
| ·PVA/PAA的离子电导率 | 第180页 |
| ·PVA/PAA的电化学性能 | 第180-181页 |
| ·循环伏安 | 第181页 |
| ·交流阻抗 | 第181页 |
| ·安全注入电荷密度 | 第181页 |
| ·PVA/PAA的非特异蛋白吸附 | 第181-182页 |
| ·细胞培养实验 | 第182-183页 |
| ·免疫组化实验 | 第183-184页 |
| ·植入手术 | 第183页 |
| ·免疫组化实验 | 第183页 |
| ·统计学分析 | 第183-184页 |
| ·扫描电子显微镜 | 第184-185页 |
| 3.结果和讨论 | 第185-196页 |
| ·红外分析 | 第185-186页 |
| ·溶胀率 | 第186-187页 |
| ·本体离子电导率 | 第187-188页 |
| ·循环伏安 | 第188-189页 |
| ·电化学阻抗 | 第189-190页 |
| ·最大安全注入电荷密度 | 第190-191页 |
| ·蛋白吸附 | 第191-192页 |
| ·细胞培养 | 第192-193页 |
| ·免疫组化 | 第193-195页 |
| ·修饰材料的稳定性 | 第195-196页 |
| 4.结论 | 第196-197页 |
| 参考文献 | 第197-201页 |
| 第六章 基于聚氨酯的水凝胶修饰材料 | 第201-229页 |
| 1.引言 | 第201-203页 |
| 2.实验部分 | 第203-212页 |
| ·实验主要试剂和仪器 | 第203-205页 |
| ·实验的前期准备 | 第205页 |
| ·氧化铱电极的制备 | 第205页 |
| ·生物实验样品准备 | 第205页 |
| ·聚合物的合成 | 第205-207页 |
| ·PU的合成 | 第205-206页 |
| ·PVA/PU的合成 | 第206-207页 |
| ·红外分析 | 第207页 |
| ·溶胀率 | 第207-208页 |
| ·离子电导率 | 第208页 |
| ·电化学性能 | 第208-209页 |
| ·循环伏安 | 第208-209页 |
| ·交流阻抗 | 第209页 |
| ·安全注入电荷密度 | 第209页 |
| ·非特异蛋白吸附 | 第209-210页 |
| ·细胞培养实验 | 第210页 |
| ·免疫组化实验 | 第210-212页 |
| ·植入手术 | 第210-211页 |
| ·免疫组化实验 | 第211页 |
| ·统计学分析 | 第211-212页 |
| 3.结果和讨论 | 第212-225页 |
| ·红外分析 | 第212-213页 |
| ·溶胀率 | 第213-214页 |
| ·本体离子电导率 | 第214-215页 |
| ·循环伏安 | 第215-217页 |
| ·电化学阻抗 | 第217-218页 |
| ·最大安全注入电荷密度 | 第218-219页 |
| ·蛋白吸附 | 第219-220页 |
| ·细胞培养 | 第220-221页 |
| ·免疫组化 | 第221-225页 |
| 4.结论 | 第225-226页 |
| 参考文献 | 第226-229页 |
| 攻读博士期间的主要科研成果 | 第229-232页 |
| 致谢 | 第232页 |
