| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 文献综述 | 第8-17页 |
| ·国内外污水排放毒性测试方法的研究现状 | 第8-10页 |
| ·传统的仪器监测研究进展 | 第8页 |
| ·生物方法评价排水毒性的研究进展 | 第8-10页 |
| ·生物方法评价排水毒性的优势 | 第8-9页 |
| ·国外生物方法评价排水毒性的研究进展 | 第9页 |
| ·国内生物方法评价排水毒性的研究进展 | 第9-10页 |
| ·鱼类作为实验动物的优势 | 第10-11页 |
| ·污水的致畸变效应研究 | 第11-12页 |
| ·视黄酸的畸变效应研究 | 第12-13页 |
| ·视黄酸导致的畸变现象 | 第12页 |
| ·视黄酸致畸变机制 | 第12-13页 |
| ·RA 调控相关基因介绍 | 第13-17页 |
| ·RA 受体相关基因（RARs，RXRs） | 第13-14页 |
| ·RA 代谢基因（CYP26） | 第14页 |
| ·骨形态发生蛋白（BMPs） | 第14-15页 |
| ·血管内皮生长因子（VEGF） | 第15页 |
| ·眼睛发育相关基因（PAX6） | 第15-17页 |
| 第2章 实验材料及方法 | 第17-30页 |
| ·青鳉鱼胚胎形态水平实验材料与方法 | 第17-18页 |
| ·实验仪器 | 第17页 |
| ·实验用鱼的饲养和繁殖 | 第17页 |
| ·鱼卵孵化液及孵化条件 | 第17-18页 |
| ·暴露组条件设置 | 第18页 |
| ·青鳉鱼卵分子水平实验材料与方法 | 第18-25页 |
| ·Trizol 试剂提取鱼卵总RNA 方法 | 第18-19页 |
| ·组织样品总RNA 的DNase I 酶处理及纯化 | 第19-20页 |
| ·反转录反应（cDNA 第一链的合成） | 第20页 |
| ·实时定量RT-PCR 方法 | 第20-25页 |
| ·受体试验的试验材料与方法 | 第25-30页 |
| ·试剂、标准品、仪器 | 第25页 |
| ·样品的前处理方法 | 第25页 |
| ·试剂的配制 | 第25-27页 |
| ·实验步骤 | 第27-30页 |
| ·Ah 受体效应测试步骤 | 第27-28页 |
| ·E2 与RA 受体效应测试步骤 | 第28-30页 |
| 第3章 实验结果及分析 | 第30-47页 |
| ·青鳉鱼胚胎形态水平毒性效应的试验结果 | 第30-37页 |
| ·二沉水形态水平毒性效应 | 第30-32页 |
| ·视黄酸形态水平毒性效应 | 第32-35页 |
| ·雌二醇（E2）暴露胚胎试验结果 | 第35页 |
| ·靛玉红（Indirubin）暴露胚胎试验结果 | 第35-36页 |
| ·污水具有RA 活性的馏分暴露胚胎试验结果 | 第36-37页 |
| ·青鳉鱼胚胎分子水平毒性效应的试验结果 | 第37-44页 |
| ·污水具有RA 活性的馏分分子水平毒性效应 | 第37-41页 |
| ·污水具有RA 活性的馏分对RA 受体相关基因表达的影响 | 第37-39页 |
| ·污水具有RA 活性的馏分对视CYP26 的表达影响 | 第39页 |
| ·污水具有RA 活性的馏分对血管内皮生长因子（VEGF）的表达影响 | 第39-40页 |
| ·污水具有RA 活性的馏分对骨形态发生蛋白（BMPs）的表达影响 | 第40页 |
| ·污水具有RA 活性的馏分对眼睛发育相关基因（PAX6）的表达影响 | 第40-41页 |
| ·视黄酸分子水平毒性效应 | 第41-44页 |
| ·视黄酸对RA 受体相关基因（RARs，RXRs）表达的影响 | 第41-42页 |
| ·视黄酸对RA 代谢基因（CYP26）表达的影响 | 第42-43页 |
| ·视黄酸对血管内皮生长因子（VEGF）的表达影响 | 第43页 |
| ·视黄酸对骨形态发生蛋白（BMPs）的表达影响 | 第43-44页 |
| ·视黄酸对眼睛发育相关基因（PAX6）的表达影响 | 第44页 |
| ·酵母实验结果 | 第44-47页 |
| ·污水ER 活性分析 | 第44-45页 |
| ·污水RA 活性分析 | 第45-46页 |
| ·污水Ah 活性分析 | 第46-47页 |
| 第4章 结论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
