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具有SOD和GPX活性模拟物的构建及其生物学效应的研究

第一章 本论文立论依据第1-24页
第二章 模拟SOD的多肽合成和表征第24-37页
 第一节 序言第24-25页
 第二节 超氧化物歧化酶的多肽模拟物第25-33页
  一、实验材料第25-26页
  二、实验方法第26-29页
   2.1 多肽合成试剂处理第26-28页
   2.2 多肽的合成第28-29页
   2.3 17P的金属离子螯合物的制备第29页
   2.4 SOD的活力测定第29页
  三、结果第29-32页
   3.1 17P的设计第29-30页
   3.2 17P的质谱分析第30页
   3.3 17P的活力测定第30-32页
   3.4 17P的圆二色谱分析第32页
  四、讨论第32-33页
 本章小结第33页
 参考文献第33-37页
第三章 含硒多肽模拟 GPX第37-58页
 第一节 序言第37-38页
 第二节 硒代半胱氨酸及其衍生物的合成第38-46页
  一、实验材料第38-39页
  二、实验方法第39-43页
   2.1 β-氯-丙氨酸的合成第39-40页
   2.2 硒代胱氛酸的合成第40-41页
   2.3 H-Sec(PMB)-OH的合成第41页
   2.4 Fmc-Sec(PMB)-OH的合成第41-42页
   2.5 硒代胱氨酸及其衍生物的检测方法第42页
   2.6 硒代胱氨酸及其衍生物的验证第42-43页
  三、结果与讨论第43-46页
   3.1 Fmoc-Sec(PMB)-OH逆推结果第43-44页
   3.2 H-Sec(PMB)-OH逆推结果第44-45页
   3.3 Fmoc-Sec(PMB)-OH的质谱分析第45-46页
 第三节 合成具有GPX活性的多肽第46-54页
  一、实验材料第46页
  二、实验方法第46-49页
   2.1 多肽合成第46-48页
   2.2 GPX活力测定第48页
   2.3 稳态动力学研究第48-49页
   2.4 最适反应pH值和温度第49页
  三、结果第49-54页
   3.1 5P的设计第49页
   3.2 5P的质谱分析第49-50页
   3.3 SP的GPX活力第50-51页
   3.4 5P最适pH值和温度第51页
   3.5 SP稳态动力学性质研究第51-54页
  四、讨论第54页
 本章小结第54-55页
 参考文献第55-58页
第四章 GPX模拟物生物学效应的研究第58-81页
 第一节 序言第58-60页
 第二节 5P保护心肌线粒体抗氧化损伤的作用第60-66页
  一、实验材料第60-61页
  二、实验方法第61-62页
   2.1 牛心线粒体的制备第61页
   2.2 Fe~(2+)/Vc诱导线粒体损伤第61页
   2.3 线粒体膨胀度的测定第61页
   2.4 脂质过氧化水平的测定第61-62页
   2.5 统计学分析第62页
  三、结果第62-65页
   3.1 5P对损伤线粒体膨胀度的影响第62-64页
   3.2 5P抑制损伤线粒体的脂质过氧化作用第64-65页
  四、讨论第65-66页
 第三节 5P对过氧化氢诱导肝细胞损伤的保护作用第66-74页
  一、实验材料第66-67页
  二、实验方法第67-69页
   2.1 细胞的原代培养第67页
   2.2 过氧化氢对细胞的损伤第67-68页
   2.3 自由基诱生系统中脂质过氧化物丙二醛的测定第68页
   2.4 MTT法测定细胞存活率第68-69页
   2.5 细胞胞浆酶—乳酸脱氮酶(LDH)含量测定第69页
  三、结果第69-74页
   3.1 不同浓度的5P对H_2O_2诱导损伤肝细胞的MDA含量的影响第69-70页
   3.2 不同浓度的5P对H_2O_2诱导损伤肝细胞的LDH的影响第70-73页
   3.3 不同浓度的5P对H_2O_2诱导损伤肝细胞存活率的影响第73-74页
  四、讨论第74页
 本章小结第74-75页
 参考文献第75-81页
第五章 文献综述第81-134页
 第一节 活性氧的氧化损伤与致病机理第81-98页
 第二节 多肽合成方法的研究与应用第98-106页
 第三节 超氧化物歧化酶的人工模拟第106-113页
 第四节 人工模拟酶的研究进展第113-134页
作者简历第134-135页
致谢第135-136页
中文摘要第136-140页
英文摘要第140-144页

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