| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-19页 |
| 研究现状、成果 | 第12-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-19页 |
| 一、CD133、CD24、CD44和CD221在非小细胞肺癌细胞株中表达水平的研究 | 第19-39页 |
| ·对象和方法 | 第19-23页 |
| ·材料 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19页 |
| ·主要仪器设备 | 第19-20页 |
| ·主要试剂溶液的配制 | 第20页 |
| ·细胞培养 | 第20-21页 |
| ·单参数法检测CD分子的表达水平 | 第21-22页 |
| ·双参数法检测CD分子的表达水平 | 第22页 |
| ·统计学处理 | 第22-23页 |
| ·结果 | 第23-33页 |
| ·单参数流式检测肺癌细胞株中CD133.CD24.CD44.CD221的表达水平示意图 | 第23-24页 |
| ·单参数流式检测肺腺癌细胞株A549中CD133、CD24、CD44和CD #221的表达水平 | 第24-25页 |
| ·单参数流式检测肺鳞癌细胞株YTMLC-9中CD133、CD24、CD44、CD221的表达水平 | 第25-27页 |
| ·单参数流式检测肺大细胞肺癌细胞株L9981 中 CD133、CD24、CD #44和CD221的表达水平 | 第27-28页 |
| ·单参数流式检测大细胞肺癌细胞株NL9980中CD133、CD24、CD #44和CD221的表达水平 | 第28-29页 |
| ·双参数标记法检测L9981中的CD133、CD24和CD221的表达 | 第29-30页 |
| ·双参数标记法检测L9980中的CD133、CD24和CD221的表达 | 第30-33页 |
| ·讨论 | 第33-38页 |
| ·小结 | 第38-39页 |
| 二、无血清悬浮培养并顺铂诱导处理A549和L9981细胞富集肺癌球体细胞及其生物学功能研究 | 第39-60页 |
| ·对象与方法 | 第39-47页 |
| ·细胞株 | 第39页 |
| ·主要试剂和设备 | 第39-40页 |
| ·主要实验设备 | 第40-41页 |
| ·主要试剂溶液的配制 | 第41-42页 |
| ·细胞培养 | 第42-43页 |
| ·顺铂诱导处理细胞 | 第43页 |
| ·检测无血清悬浮培养并顺铂处理后的A549和L9981细胞和各自血清贴壁培养细胞的增值能力和倍增时间并绘制生长曲线 | 第43-44页 |
| ·Transwell侵袭试验 | 第44-45页 |
| ·致瘤性分析 | 第45-46页 |
| ·统计分析 | 第46-47页 |
| ·结果 | 第47-56页 |
| ·无血清悬浮培养并顺铂诱导处理细胞和含血清贴壁培养细胞的形态比较 | 第47-49页 |
| ·无血清顺铂处理前后细胞生长曲线比较 | 第49-52页 |
| ·Transwell侵袭实验结果 | 第52-53页 |
| ·裸鼠成瘤性实验结果 | 第53-56页 |
| ·讨论 | 第56-59页 |
| ·小结 | 第59-60页 |
| 三、CD133和CD24在肺癌干细胞样细胞中的表达水平和裸鼠移植瘤的研究 | 第60-70页 |
| ·对象和方法 | 第60-62页 |
| ·细胞株和实验组织 | 第60页 |
| ·主要试剂和材料 | 第60页 |
| ·主要仪器设备 | 第60页 |
| ·主要试剂溶液的配制 | 第60页 |
| ·无血清悬浮的肺癌干细胞样细胞上机检测CD133、CD24的表达水平 | 第60页 |
| ·裸鼠体内所致肿瘤的HE染色和免疫组织化学研究 | 第60页 |
| ·移植瘤组织中CD133和CD24免疫组化分析 | 第60-62页 |
| ·结果 | 第62-66页 |
| ·顺铂诱导处理肿瘤细胞L9981、A549在逐代培养中CD133、CD24表达水平 | 第62-64页 |
| ·移植瘤组织病理切片情况 | 第64-65页 |
| ·移植瘤组织CD133和CD24免疫组化结果 | 第65-66页 |
| ·讨论 | 第66-69页 |
| ·小结 | 第69-70页 |
| 结论 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-80页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第80-81页 |
| 在学期间发表论文的情况 | 第80页 |
| 在学期间参加科研的情况 | 第80-81页 |
| 综述 | 第81-97页 |
| 综述参考文献 | 第90-97页 |
| 致谢 | 第97页 |
