手性α-氨基醇的化学合成和生物转化
| 中文摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 符号说明 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-30页 |
| 1 生物催化拨基不对称还原的特点 | 第12-13页 |
| 1．1 高度的立体选择性 | 第12页 |
| 1．2 安全性 | 第12-13页 |
| 1．3 催化剂来源广泛 | 第13页 |
| 1．4 微生物转化收率高 | 第13页 |
| 2 促进生物转化立体选择性的方法 | 第13-19页 |
| 2．1 寻找新的生物催化剂 | 第13-16页 |
| 2．1．1 酶的筛选 | 第13-14页 |
| 2．1．2 过量表达 | 第14-15页 |
| 2．1．3 定向进化 | 第15页 |
| 2．1．4 催化抗体 | 第15-16页 |
| 2．2 底物的结构修饰 | 第16-17页 |
| 2．3 反应条件的优化 | 第17-19页 |
| 2．3．1 丙酮处理细胞 | 第17页 |
| 2．3．2 溶剂 | 第17-19页 |
| 2．3．3 抑制剂 | 第19页 |
| 3 面包酵母用于生物催化反应 | 第19-28页 |
| 3．1 无环酮的还原 | 第19-26页 |
| 3．1．1 简单酮 | 第19-20页 |
| 3．1．2 β-酮酯 | 第20-22页 |
| 3．1．3 α-单取代酮-β-酮酯 | 第22-26页 |
| 3．2 环状酮的还原 | 第26-27页 |
| 3．2．1 环状β-二酮 | 第26-27页 |
| 3．2．2 环状β-酮酯 | 第27页 |
| 3．3 其他类型酮 | 第27-28页 |
| 4 设计思想 | 第28-30页 |
| 第二章 底物合成 | 第30-37页 |
| 1 仪器与试剂 | 第30-31页 |
| 1．1 试剂及精制 | 第30-31页 |
| 1．2 试剂制备 | 第31页 |
| 2 底物合成 | 第31-34页 |
| 3 化合物结构确认 | 第34-36页 |
| 4 试验小结 | 第36-37页 |
| 第三章 面包酵母用于手性氨基醇合成的探讨 | 第37-47页 |
| 1 材料与方法 | 第37-39页 |
| 1．1 菌种 | 第37页 |
| 1．2 底物与试剂 | 第37页 |
| 1．3 仪器设备 | 第37页 |
| 1．4 实验方法 | 第37-39页 |
| 1．4．1 试验设计 | 第37-38页 |
| 1．4．2 菌体获得 | 第38页 |
| 1．4．3 不对称还原反应 | 第38页 |
| 1．4．4 产物的分析 | 第38-39页 |
| 2 正交试验结果与讨论 | 第39-44页 |
| 2．1 正交试验结果 | 第39-40页 |
| 2．2 正交试验结果的讨论 | 第40-44页 |
| 2．2．1 反应温度对转化的影响 | 第40-41页 |
| 2．2．2 反应pH对转化的影响 | 第41页 |
| 2．2．3 反应体系中底物浓度对转化的影响 | 第41-42页 |
| 2．2．4 反应体系中细胞浓度对转化的影响 | 第42页 |
| 2．2．5 反应中辅助底物浓度对转化的影响 | 第42-44页 |
| 3 面包酵母催化还原结果 | 第44-45页 |
| 4 面包酵母催化还原结果讨论 | 第45-47页 |
| 第四章 白地霉用于手性氨基醇合成的探讨 | 第47-52页 |
| 1 材料与方法 | 第47-48页 |
| 1．1 菌种 | 第47页 |
| 1．2 培养基 | 第47页 |
| 1．3 底物与试剂 | 第47页 |
| 1．4 仪器设备 | 第47页 |
| 1．5 试验方法 | 第47-48页 |
| 1．5．1 菌种复苏培养 | 第47页 |
| 1．5．2 菌体培养 | 第47页 |
| 1．5．3 白地霉催化碳基生物还原 | 第47-48页 |
| 2 白地霉催化还原结果 | 第48页 |
| 3 讨论 | 第48-52页 |
| 总结与展望 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 攻读学位期间发表文章 | 第61-62页 |
| 附图 | 第62-93页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第93页 |
