| 目录 | 第1-5页 |
| 缩写词 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 第一章 温度、GAs对蝴蝶兰生长的影响 | 第8-21页 |
| 前言 | 第8-11页 |
| 1． 概述 | 第8-9页 |
| 2． 温度对蝴蝶兰开花的影响 | 第9-10页 |
| 3． GAs对蝴蝶兰开花的影响 | 第10-11页 |
| 一、 材料与方法 | 第11-12页 |
| 1． 材料及培养条件 | 第11-12页 |
| 2． 测量方法 | 第12页 |
| 二、 结果与分析 | 第12-18页 |
| 1． 温度处理对蝴蝶兰营养生长的影响 | 第12-14页 |
| 2． GAs对蝴蝶兰营养生长的影响 | 第14页 |
| 3． 温度处理对蝴蝶兰花序轴抽出及开花的影响 | 第14-16页 |
| 3．1 温度处理对蝴蝶兰开花时间的影响 | 第14-16页 |
| 3．2 温度处理对花序轴高度、直茎及开花数目的影响 | 第16页 |
| 4． GAs处理对蝴蝶兰花序轴抽出及开花的影响 | 第16-18页 |
| 4．1 GAs处理对蝴蝶兰开花时间的影响 | 第16-17页 |
| 4．2 GAs处理对花序轴高度、直茎及开花数目的影响 | 第17-18页 |
| 三、 讨论 | 第18-20页 |
| 四、 小结 | 第20-21页 |
| 第二章 蝴蝶兰成花诱导过程中叶片内源IAA、ABA、GA_3的变化的毛细管电泳法测定 | 第21-35页 |
| 前言 | 第21-23页 |
| 一、 材料与方法 | 第23-24页 |
| 1． 蝴蝶兰的培养方法 | 第23页 |
| 2． 取样方法 | 第23页 |
| 3． 激素的初步提取 | 第23-24页 |
| 4． 毛细管电泳法测定植物内源IAA、ABA、GA_3 | 第24页 |
| 二、 结果与分析 | 第24-32页 |
| （一） IAA、ABA、GA_3在CE上的分离 | 第24-30页 |
| 1． 分离效果 | 第24-25页 |
| 2． 重复性检验 | 第25-26页 |
| 3． 不同电泳条件对三种激素分离效果的影响及电泳条件的优化 | 第26页 |
| 4． 标准曲线 | 第26-29页 |
| 5． 吸收峰的定性 | 第29页 |
| 6． 样品中三种激素的分离效果 | 第29-30页 |
| （二） 蝴蝶兰叶片内源激素的测定 | 第30-32页 |
| 1． 温度诱导对蝴蝶兰内源CA_3含量的影响 | 第30-31页 |
| 2． 温度诱导对蝴蝶兰内源IAA含量的影响 | 第31-32页 |
| 3． 温度诱导对蝴蝶兰内源ABA含量的影响 | 第32页 |
| 三、 讨论 | 第32-34页 |
| 1． 应用CZE法分离IAA、ABA、GA_3 | 第32-33页 |
| 2． 蝴蝶兰成花诱导期内源GA_3、IAA、ABA含量的变化 | 第33-34页 |
| 四、结论 | 第34-35页 |
| 第三章 蝴蝶兰成花诱导过程中基因差异表达的研究 | 第35-50页 |
| 前言 | 第35-38页 |
| 1． 概述 | 第35-37页 |
| 2． DD RT-PCR的基本原理及过程 | 第37-38页 |
| 一、 材料与方法 | 第38-42页 |
| 1． 材料 | 第38页 |
| 2． TriBlue法提取RNA | 第38页 |
| 3． 第一链cDNA的合成（RT） | 第38-39页 |
| 4． 非荧光引物PCR产物的琼脂糖电泳预检 | 第39页 |
| 5． 荧光标记差异显示PCR（DDRT-PCR） | 第39-40页 |
| 6． 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳分离差显片断 | 第40-41页 |
| 7． 测序及分析 | 第41-42页 |
| 二、 结果与分析 | 第42-45页 |
| 1． RNA的提取效果 | 第42页 |
| 2． PCR产物的琼脂糖电泳预检 | 第42-44页 |
| 3． 使用荧光引物扩增的PCR产物的聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 | 第44页 |
| 4． 差异条带的切割及验证 | 第44页 |
| 5． 差异条带的再扩增 | 第44页 |
| 6． 测序结果 | 第44-45页 |
| 三、 讨论 | 第45-47页 |
| 四、小结 | 第47-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
