反义磷脂酶D_γ(PLD_γ)基因转化悬铃木的研究
英文缩略词 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-7页 |
1 引言 | 第7-13页 |
1.1 控制悬铃木果毛污染的研究进展 | 第7-11页 |
1.2 磷脂酶D基因的作用及研究进展 | 第11-12页 |
1.3 选题依据 | 第12-13页 |
2 材料与方法 | 第13-21页 |
2.1 实验材料 | 第13-16页 |
2.1.1 植物材料 | 第13页 |
2.1.2 菌株和质粒 | 第13-14页 |
2.1.3 细菌培养基 | 第14页 |
2.1.4 植物激素和植物培养基 | 第14-15页 |
2.1.5 试剂 | 第15-16页 |
2.1.6 PCR引物 | 第16页 |
2.2 实验方法 | 第16-21页 |
2.2.1 悬铃木再生体系的建立 | 第16-17页 |
2.2.2 悬铃木遗传转化体系的建立 | 第17-19页 |
2.2.3 转化植株的分子生物学检测 | 第19-21页 |
3 结果与分析 | 第21-33页 |
3.1 悬铃木再生体系的建立 | 第21-27页 |
3.1.1 悬铃木组培苗的获得 | 第21-23页 |
3.1.2 悬铃木叶片外植体的芽分化 | 第23-26页 |
3.1.3 悬铃木的壮苗 | 第26-27页 |
3.1.4 悬铃木根的诱导 | 第27页 |
3.2 悬铃木遗传转化体系的建立 | 第27-32页 |
3.2.1 转化植株的获得 | 第28页 |
3.2.2 选择压的确定 | 第28-29页 |
3.2.3 抑菌抗生素的选择 | 第29页 |
3.2.4 预培养对转化的影响 | 第29-30页 |
3.2.5 农杆菌菌液浓度对转化的影响 | 第30页 |
3.2.6 侵染时间对转化的影响 | 第30-31页 |
3.2.7 共培养时间对转化的影响 | 第31-32页 |
3.2.8 恢复培养对转化的影响 | 第32页 |
3.3 转化植株的分子生物学检测 | 第32-33页 |
3.3.1 PCR扩增检测 | 第32-33页 |
3.3.2 PCR-Southern杂交检测 | 第33页 |
4 讨论 | 第33-35页 |
5 结论 | 第35-36页 |
参考文献 | 第36-42页 |
英文摘要 | 第42-44页 |
图版 | 第44-49页 |
致谢 | 第49页 |