英文缩略词 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-12页 |
英文摘要 | 第12-18页 |
前言 | 第18-22页 |
材料与方法 | 第22-43页 |
一.材料 | 第22-25页 |
主要仪器和设备 | 第22-23页 |
试剂 | 第23-25页 |
二.实验方法 | 第25-43页 |
实验用液 | 第25-43页 |
(一) 整体动物实验 | 第26-27页 |
1.动物模型 | 第26-27页 |
2.肺组织形态学观察 | 第27页 |
(二) 离体细胞实验 | 第27-30页 |
1.贴块法培养PASMCs | 第27-28页 |
2.培养的PASMCs鉴定 | 第28页 |
3.培养PASMCs缺氧模型 | 第28-29页 |
4.[~3H]TdR参入检测PASMCs DNA合成:缺氧及应用受体激动剂,抑制剂后的变化 | 第29页 |
5.培养PASMCs缺氧后c-fos,c-myc表达的测定 | 第29页 |
6.培养PASMCs胞内Ca~(2+)浓度的测定 | 第29-30页 |
(三) 分子生物学实验 | 第30-41页 |
1.总RNA提取 | 第30-33页 |
2.cDNA探针制备 | 第33-39页 |
3.肺组织、肺动脉膜印迹杂交 | 第39-40页 |
4.培养的PASMCs点印迹杂交和膜印迹杂交 | 第40-41页 |
5.从尼龙膜上除去放射性标记的cDNA探针,进行GAPDH核酸分子杂交 | 第41页 |
(四) 统计学处理 | 第41-43页 |
实验结果 | 第43-54页 |
(一) 整体及分子生物学实验 | 第43-47页 |
1.缺氧大鼠Pap,Rvp,R/L+S,R/BW的变化 | 第43-44页 |
2.缺氧大鼠肺动脉的形态学变化 | 第44页 |
3.组织总RNA的鉴定 | 第44-45页 |
4.质粒DNA限制性内切酶酶切分析 | 第45页 |
5.缺氧大鼠肺组织、肺动脉α_1AR mRNA、β_2AR mRNA水平的变化 | 第45-47页 |
(二) 细胞及分子生物学实验 | 第47-54页 |
1.培养的PASMCs鉴定结果 | 第47页 |
2.缺氧后PASMCs DNA合成的变化及α_1AR、β_2AR与PASMCs增殖的关系 | 第47-49页 |
3.缺氧后PASMCs胞浆游离Ca~(2+)浓度变化 | 第49-50页 |
4.细胞总RNA的鉴定 | 第50页 |
5.缺氧PASMCs的c-fos、c-myc mRNA水平变化 | 第50页 |
6.缺氧PASMCs的α_1AR mRNA和β_2AR mRNA水平的变化 | 第50-53页 |
7.缺氧后肺组织、肺动脉及PASMCs GAPDH mRNA水平的变化 | 第53-54页 |
讨论 | 第54-62页 |
小结 | 第62-64页 |
附图 | 第64-85页 |
参考文献 | 第85-95页 |
文献综述 | 第95-134页 |
参考文献 | 第119-134页 |
致谢 | 第134页 |