| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-18页 |
| 第一章 正肝化瘀方对纤维化大鼠肝组织脂质过氧化和胶原蛋白的影响 | 第18-44页 |
| 材料和方法 | 第18-26页 |
| 1 材料 | 第18-20页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·主要试剂 | 第18-19页 |
| ·主要药物 | 第19-20页 |
| ·主要仪器 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-26页 |
| ·分组 | 第20页 |
| ·模型制备与处理 | 第20-21页 |
| ·样品采集与处理 | 第21页 |
| ·一般情况观察 | 第21页 |
| ·大鼠肝组织脂质过氧化检测 | 第21-22页 |
| ·大鼠肝组织羟脯氨酸含量测定 | 第22页 |
| ·肝组织α-SMA、Ⅰ型胶原、Ⅳ型胶原蛋白表达 | 第22-25页 |
| ·大鼠肝组织病理学观察 | 第25-26页 |
| ·大鼠肝细胞超微结构的观察 | 第26页 |
| 3 统计学处理 | 第26页 |
| 结果 | 第26-39页 |
| 1 各组大鼠一般情况与体重、肝体比、脾体比的变化 | 第26-27页 |
| 2 各组大鼠肝组织病理学变化 | 第27-35页 |
| 3 各组大鼠肝组织SOD、GSH、MDA的变化 | 第35-36页 |
| 4 各组大鼠肝组织Hyp含量变化 | 第36-37页 |
| 5 各组大鼠肝组织α-SMA蛋白表达变化 | 第37-38页 |
| 6 各组大鼠肝组织Ⅰ型、Ⅳ型胶原蛋白表达的变化 | 第38-39页 |
| 讨论 | 第39-42页 |
| 参考文献 | 第42-44页 |
| 第二章 正肝化瘀方对纤维化大鼠肝组织MMPs和TIMPs蛋白表达的影响 | 第44-54页 |
| 材料和方法 | 第44-46页 |
| 1 材料 | 第44页 |
| ·实验动物 | 第44页 |
| ·主要试剂 | 第44页 |
| ·主要药物 | 第44页 |
| ·主要仪器 | 第44页 |
| 2 方法 | 第44-46页 |
| ·分组 | 第44页 |
| ·模型制备与处理 | 第44页 |
| ·观测样品的采集与处理 | 第44页 |
| ·肝组织MMP-2、MMP-9活性测定 | 第44-46页 |
| ·肝组织MMP-2、MMP-9蛋白表达 | 第46页 |
| ·肝组织TIMP-1、TIMP-2蛋白表达 | 第46页 |
| 3 统计学处理 | 第46页 |
| 结果 | 第46-51页 |
| 1 各组大鼠肝组织MMP-2、MMP-9活性的变化 | 第46-48页 |
| 2 各组大鼠肝组织MMP-2、MMP-9蛋白表达的变化 | 第48-49页 |
| 3 各组大鼠肝组织TIMP-1、TIMP-2蛋白表达的变化 | 第49-51页 |
| 讨论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-54页 |
| 第三章 正肝化瘀方对纤维化大鼠肝组织TNFR介导的信号转导通路的影响 | 第54-65页 |
| 材料和方法 | 第54-56页 |
| 1 材料 | 第54-55页 |
| ·实验动物 | 第54页 |
| ·主要试剂 | 第54-55页 |
| ·主要药物 | 第55页 |
| ·主要仪器 | 第55页 |
| 2 方法 | 第55-56页 |
| ·分组 | 第55页 |
| ·模型制备与处理 | 第55页 |
| ·样品的采集与处理 | 第55页 |
| ·肝组织TNF-α mRNA基因表达 | 第55-56页 |
| ·肝组织TNF-α、TNFR、P-IκB蛋白表达 | 第56页 |
| ·肝组织NF-κB活性测定 | 第56页 |
| 3 统计学处理 | 第56页 |
| 结果 | 第56-61页 |
| 1 各组大鼠肝组织TNF-α mRNA基因表达的变化 | 第57-58页 |
| 2 各组大鼠肝组织TNF-α、TNFR蛋白表达的变化 | 第58-59页 |
| 3 各组大鼠肝组织P-IκB蛋白表达的变化 | 第59-60页 |
| 4 各组大鼠肝组织NF-κB活性的变化 | 第60-61页 |
| 讨论 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 创新点 | 第66-67页 |
| 综述:肝纤维化发生的分子机制研究进展 | 第67-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 附录一 参加会议和发表的论文 | 第83-84页 |
| 附录二 实验常用技术 | 第84-106页 |
