| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-14页 |
| 第一章绪论 | 第14-22页 |
| 1.1食品生物质糖类副产物的利用及其局限性 | 第14页 |
| 1.2双水相体系萃取研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2.1双水相体系的概述和发展 | 第14-15页 |
| 1.2.2离子液双水相体系的定义及特点 | 第15页 |
| 1.2.3离子液双水相体系的萃取原理及其应用 | 第15页 |
| 1.2.4离子液双水相体系存在的问题与展望 | 第15-16页 |
| 1.3低共熔溶剂概述及其应用 | 第16-17页 |
| 1.3.1低共熔溶剂的概念和性质 | 第16-17页 |
| 1.3.2低共熔溶剂的类型和应用 | 第17页 |
| 1.3.3影响低共熔溶剂双水相体系萃取分离的因素 | 第17页 |
| 1.4动态和可逆单/双相系统的构建和研究进展 | 第17-19页 |
| 1.4.1动态可逆双相系统的概述和应用 | 第17-18页 |
| 1.4.2pH驱动可切换生产和分离集成体系的构建 | 第18-19页 |
| 1.4.3pH驱动可切换低共熔溶剂双水相体系原理 | 第19页 |
| 1.5本论文的研究意义和内容 | 第19-22页 |
| 1.5.1研究目的和意义 | 第19-20页 |
| 1.5.2研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章离子液双水相体系的构建及催化分离应用 | 第22-35页 |
| 2.1前言 | 第22-23页 |
| 2.2材料和仪器 | 第23页 |
| 2.2.1试剂 | 第23页 |
| 2.2.2仪器与设备 | 第23页 |
| 2.3试验方法 | 第23-26页 |
| 2.3.1相图的绘制 | 第23-24页 |
| 2.3.2UV法测定5-HMF的质量 | 第24页 |
| 2.3.3DNS法测定还原糖的含量 | 第24-25页 |
| 2.3.4离子液双水相体系萃取5-HMF和果糖 | 第25页 |
| 2.3.5高效液相色谱法（HPLC）测定5-HMF和果糖 | 第25-26页 |
| 2.3.6数据统计与分析方法 | 第26页 |
| 2.4结果与讨论 | 第26-33页 |
| 2.4.1双水相相图分析 | 第26-28页 |
| 2.4.2无机盐种类及浓度对于IL-ATPS萃取5-HMF的影响 | 第28页 |
| 2.4.3离子液浓度对于IL-ATPS萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.4时间和温度对于IL-ATPS萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.5果糖和5-HMF浓度对于IL-ATPS萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第30页 |
| 2.4.6离子液双水相体系应用于不同种类的碳水化合物和5-HMF的分离效果 | 第30-32页 |
| 2.4.7离子液重复利用 | 第32页 |
| 2.4.8果糖生产5-HMF集成体系 | 第32-33页 |
| 2.5小结 | 第33-35页 |
| 第三章低共熔溶剂合成分析及双水相体系构建 | 第35-55页 |
| 3.1前言 | 第35-36页 |
| 3.2材料和仪器 | 第36页 |
| 3.2.1试剂 | 第36页 |
| 3.2.2仪器与设备 | 第36页 |
| 3.3试验方法 | 第36-39页 |
| 3.3.1低共熔溶剂的合成 | 第36-37页 |
| 3.3.2低共熔溶剂性质分析 | 第37页 |
| 3.3.3相图的绘制 | 第37-38页 |
| 3.3.4紫外-可见分光光度计测定5-HMF含量 | 第38页 |
| 3.3.5DNS法测定还原糖的含量 | 第38页 |
| 3.3.6低共熔溶剂双水相体系萃取5-HMF和果糖 | 第38页 |
| 3.3.7数据统计与分析方法 | 第38-39页 |
| 3.4结果与讨论 | 第39-53页 |
| 3.4.1低共熔溶剂的表征分析 | 第39-45页 |
| 3.4.2低共熔溶剂双水相体系的构建 | 第45-46页 |
| 3.4.3DES种类对萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.4DES浓度对萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第47-48页 |
| 3.4.5无机盐浓度对萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第48-49页 |
| 3.4.6温度对萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第49-50页 |
| 3.4.7时间对萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.8萃取物浓度对萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第51-52页 |
| 3.4.9低共熔溶剂双水相体系萃取分离5-HMF和果糖机理分析 | 第52-53页 |
| 3.5本章小结 | 第53-55页 |
| 第四章可切换（pH驱动）DES-ATPS作为生产-分离5-HMF的集成体系 | 第55-72页 |
| 4.1前言 | 第55-56页 |
| 4.2材料和仪器 | 第56页 |
| 4.2.1材料 | 第56页 |
| 4.2.2仪器与设备 | 第56页 |
| 4.3试验方法 | 第56-58页 |
| 4.3.1疏水性低共熔溶剂的合成 | 第56页 |
| 4.3.2相图的绘制 | 第56-57页 |
| 4.3.3低共熔溶剂双水相体系萃取5-HMF和果糖 | 第57页 |
| 4.3.4pH驱动DES-ATPS生产-分离集成体系的构建 | 第57页 |
| 4.3.5pH驱动集成体系应用于生物质 | 第57页 |
| 4.3.6高效液相色谱法（HPLC）测定5-HMF和果糖 | 第57-58页 |
| 4.3.7pH的测定 | 第58页 |
| 4.3.8数据统计与分析方法 | 第58页 |
| 4.4结果与讨论 | 第58-70页 |
| 4.4.1低共熔溶剂表征及不同pH下成相情况 | 第58-59页 |
| 4.4.2DES+K3C6H5O7+H2O的相图 | 第59-60页 |
| 4.4.3不同pH对相图的影响 | 第60-61页 |
| 4.4.4DES的种类对DES-ATPS萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第61-62页 |
| 4.4.5DES浓度对DES-ATPS萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第62-63页 |
| 4.4.6无机盐浓度对DES-ATPS萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第63-64页 |
| 4.4.7时间对DES-ATPS萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第64-65页 |
| 4.4.8萃取物浓度对DES-ATPS萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第65-66页 |
| 4.4.9不同pH对DES-ATPS萃取分离5-HMF和果糖的影响 | 第66-67页 |
| 4.4.10pH驱动体系单双相转变原理 | 第67-68页 |
| 4.4.11DES-ATPS作为生产-分离的集成体系 | 第68-70页 |
| 4.5本章小结 | 第70-72页 |
| 第五章结论与展望 | 第72-75页 |
| 5.1结论 | 第72-74页 |
| 5.2展望 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第86-87页 |
