摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩写 | 第7-10页 |
第1章 绪论 | 第10-17页 |
·转录因子参与基因转录调控的研究 | 第10-11页 |
·干细胞神经分化简介 | 第11-13页 |
·干细胞的背景知识 | 第11-12页 |
·干细胞的神经发生 | 第12页 |
·P19细胞是多能性干细胞 | 第12-13页 |
·FoxA1转录因子简介 | 第13-14页 |
·神经巢蛋白(NESTIN) | 第14-15页 |
·本文构思 | 第15-17页 |
第2章 腺病毒介导的FOXA1高表达体系 | 第17-28页 |
·前言 | 第17-18页 |
·实验材料 | 第18-19页 |
·实验方法 | 第19-23页 |
·病毒构建 | 第19页 |
·腺病毒的扩增及纯化 | 第19-23页 |
·病毒感染 | 第23页 |
·实验结果 | 第23-26页 |
·腺病毒构建及鉴定 | 第23-24页 |
·腺病毒的扩增、纯化和滴度测定 | 第24-25页 |
·病毒感染及结果 | 第25-26页 |
·讨论 | 第26-28页 |
第3章 FOXA1调节NESTIN的转录研究 | 第28-52页 |
·前言 | 第28-29页 |
·实验材料 | 第29-30页 |
·实验方法 | 第30-44页 |
·RA诱导、高表达FoxA1以及干扰FoxA1三种细胞体系的建立 | 第30-35页 |
·染色质免疫共沉降实验 | 第35-38页 |
·Nestin基因启动子克隆 | 第38-44页 |
·实验结果 | 第44-50页 |
·FoxA1与Nestin的表达存在相关性 | 第44-47页 |
·Nestin的启动子区域存在Foxal结合位点 | 第47-48页 |
·FoxA1能调节Nestin的启动子 | 第48-50页 |
·讨论 | 第50-51页 |
·小结 | 第51-52页 |
第4章 FOXM1内源性的结合到OCT4的启动子区域 | 第52-56页 |
·前言 | 第52-53页 |
·实验材料 | 第53页 |
·实验方法 | 第53-54页 |
·实验结果 | 第54页 |
·讨论 | 第54-55页 |
·小结 | 第55-56页 |
总结及展望 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-66页 |
附录A 攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第66-67页 |
附录B 常用缓冲液和试剂配方 | 第67-69页 |
致谢 | 第69页 |