| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-18页 |
| 1.1 果实品质概述 | 第10-12页 |
| 1.1.1 果实色泽品质 | 第10-11页 |
| 1.1.2 果实香气品质 | 第11-12页 |
| 1.2 果实中的类胡萝卜素 | 第12-18页 |
| 1.2.1 果实中类胡萝卜素的合成 | 第12-14页 |
| 1.2.2 CCDs与类胡萝卜素的裂解 | 第14-18页 |
| 第2章 引言 | 第18-20页 |
| 2.1 研究目的与意义 | 第18-19页 |
| 2.2 技术路线 | 第19-20页 |
| 第3章 杏果实发育过程中类胡萝卜素含量的变化 | 第20-28页 |
| 3.1 试验材料 | 第20-21页 |
| 3.2 试验方法 | 第21-22页 |
| 3.2.1 果实色差的测定 | 第21页 |
| 3.2.2 果实类胡萝卜素的分离鉴定 | 第21-22页 |
| 3.2.3 芳香味脱辅基类胡萝卜素的分离鉴定 | 第22页 |
| 3.3 数据分析 | 第22页 |
| 3.4 结果分析 | 第22-26页 |
| 3.4.1 果实发育过程中色差变化 | 第22-23页 |
| 3.4.2 果实发育过程中类胡萝卜素含量的变化 | 第23-24页 |
| 3.4.3 果实发育过程中芳香味脱辅基类胡萝卜素的变化 | 第24-26页 |
| 3.4.4 类胡萝卜素积累与降解的相关性 | 第26页 |
| 3.5 讨论 | 第26-28页 |
| 第4章 CCD1和CCD4的克隆与亚细胞定位 | 第28-39页 |
| 4.1 试验材料 | 第28页 |
| 4.2 试验方法 | 第28-31页 |
| 4.2.1 CCD1和CCD4的克隆 | 第28-30页 |
| 4.2.2 PaCCD1和PaCCD4亚细胞定位 | 第30页 |
| 4.2.3 PaCCD1和PaCCD4的功能预测 | 第30-31页 |
| 4.3 结果分析 | 第31-37页 |
| 4.3.1 CCD1和CCD4的基因全长序列 | 第31-32页 |
| 4.3.2 CCD1和CCD4亚细胞定位结果分析 | 第32-33页 |
| 4.3.3 CCD1和CCD4生物信息学分析 | 第33-37页 |
| 4.4 讨论 | 第37-39页 |
| 第5章 类胡萝卜素代谢相关基因的表达分析 | 第39-49页 |
| 5.1 试验材料 | 第39页 |
| 5.2 试验方法 | 第39-40页 |
| 5.2.1 RNA提取与cDNA合成 | 第39页 |
| 5.2.2 类胡萝卜素代谢相关基因的qPCR检测 | 第39-40页 |
| 5.3 结果分析 | 第40-46页 |
| 5.3.1 类胡萝卜素合成相关基因的表达 | 第40-43页 |
| 5.3.2 PaCCD1和PaCCD4的表达 | 第43-46页 |
| 5.4 讨论 | 第46-49页 |
| 第6章 CCD1和CCD4启动子克隆与顺式作用元件分析 | 第49-61页 |
| 6.1 试验材料 | 第49页 |
| 6.2 试验方法 | 第49-52页 |
| 6.2.1 基因组DNA提取 | 第49页 |
| 6.2.2 PaCCD1和PaCCD4启动子克隆 | 第49-50页 |
| 6.2.3 启动子缺失实验 | 第50-52页 |
| 6.3 结果分析 | 第52-59页 |
| 6.3.1 PaCCD1与PaCCD4的启动子序列 | 第52页 |
| 6.3.2 CCD1与CCD4启动子的顺式作用元件分析 | 第52-58页 |
| 6.3.3 启动子缺失实验分析 | 第58-59页 |
| 6.4 讨论 | 第59-61页 |
| 第7章 小结与展望 | 第61-63页 |
| 7.1 小结 | 第61-62页 |
| 7.2 展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 发表论文 | 第76页 |
