报送博士学位论文简况表(英 文) | 第4-5页 |
报送博士学位论文简况表 | 第5-9页 |
中英文缩写词对照 | 第9-11页 |
中文摘要 | 第11-15页 |
ABSTRACT | 第15-19页 |
1 前言 | 第20-24页 |
2 实验材料 | 第24-30页 |
2.1 实验动物 | 第24页 |
2.2 药品与试剂 | 第24-27页 |
2.3 仪器与设备 | 第27-28页 |
2.4 溶液和试剂的配制 | 第28-30页 |
3 实验方法 | 第30-51页 |
3.1 LPS诱导 ALI 小鼠模型的建立、实验分组 | 第30页 |
3.2 小鼠原代肺泡巨噬细胞分离、培养、鉴定 | 第30-32页 |
3.3 小鼠血清和肺组织标本采集 | 第32-33页 |
3.4 小鼠肺湿干重比 | 第33页 |
3.5 小鼠髓过氧化物酶检测 | 第33-35页 |
3.6 小鼠肺组织病理形态学检查 | 第35-36页 |
3.7 免疫荧光制片检测小鼠肺组织中NLRC5的表达 | 第36页 |
3.8 免疫荧光双染 | 第36-37页 |
3.9 细胞培养 | 第37-40页 |
3.10 细胞转染 | 第40页 |
3.11 PDTC处理细胞 | 第40-41页 |
3.12 SB203580处理细胞 | 第41页 |
3.13 qRT-PCR | 第41-45页 |
3.14 Westernblot | 第45-49页 |
3.15 ELISA法检测TNF-α、IL-1β和IL-6的释放水平 | 第49页 |
3.16 统计学分析 | 第49-51页 |
4.实验结果 | 第51-78页 |
4.1 NLRC5在急性肺损伤肺组织中的表达 | 第51-61页 |
4.1.1 小鼠基本情况 | 第51页 |
4.1.2 肺组织病理形态学改变 | 第51-52页 |
4.1.3 肺脏湿干比测定 | 第52-53页 |
4.1.4 肺组织MPO活性测定 | 第53页 |
4.1.5 NLRC5在小鼠ALI模型中肺组织中的表达 | 第53-54页 |
4.1.6 在小鼠ALI模型肺组织中NLRC5、CD68共定位于活化的肺泡巨噬细胞 | 第54-55页 |
4.1.7 原代培养和鉴定小鼠肺泡巨噬细胞 | 第55-56页 |
4.1.8 NLRC5在小鼠ALI原代肺泡巨噬细胞中的表达 | 第56-57页 |
4.1.9 小鼠ALI支气管肺泡灌洗液中TNF-α、IL-1β、IL-6的表达 | 第57-58页 |
4.1.10 小鼠ALI血清中TNF-α、IL-1β、IL-6的表达 | 第58-59页 |
4.1.11 小鼠ALI肺组织中TNF-α、IL-1β、IL-6的表达 | 第59-60页 |
4.1.12 小鼠ALI原代肺泡巨噬细胞中TNF-α、IL-1β、IL-6的表达 | 第60-61页 |
4.2 NLRC5对LPS诱导的MH-S细胞因子分泌的影响 | 第61-70页 |
4.2.1 LPS对MH-S细胞中NLRC5的表达影响 | 第61-64页 |
4.2.2 过表达NLRC5对LPS诱导的MH-S细胞分泌炎症细胞因子分泌的调控 | 第64-67页 |
4.2.3 NLRC5siRNA对LPS诱导的MH-S细胞分泌炎症细胞因子分泌的调控 | 第67-70页 |
4.3 NLRC5对LPS诱导MH-S细胞中NF-κB与p38MAPK信号通路的作用研究 | 第70-75页 |
4.3.1 NLRC5对LPS诱导MH-S细胞中NF-κB信号通路的调控作用 | 第70-73页 |
4.3.2 NLRC5对LPS诱导MH-S细胞中p38MAPK信号通路的调控作用 | 第73-75页 |
4.4 抑制剂对NLRC5表达的影响 | 第75-78页 |
4.4.1 PDTC对NLRC5表达的影响 | 第75-76页 |
4.4.2 SB203580对NLRC5表达的影响 | 第76-78页 |
5.讨论 | 第78-87页 |
6.结论 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-99页 |
附录 | 第99-101页 |
致谢 | 第101-103页 |
综述 | 第103-118页 |
参考文献 | 第113-118页 |