| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 文献回顾 | 第15-24页 |
| 1. 视神经损伤后的病理变化 | 第15-18页 |
| 2. 小胶质/巨噬细胞介导视神经损伤后的炎症反应 | 第18页 |
| 3. 视神经损伤后的炎症反应和轴突再生 | 第18-20页 |
| 4. AR基因的作用及在眼科方面的研究 | 第20-24页 |
| 实验一 建立视神经夹伤模型并观察 AR 在 ONC 后视神经上的表达变化 | 第24-35页 |
| 引言 | 第24-25页 |
| 1 材料 | 第25-26页 |
| 1.1 实验动物 | 第25页 |
| 1.2 实验试剂 | 第25页 |
| 1.3 实验仪器 | 第25-26页 |
| 1.4 实验抗体 | 第26页 |
| 2 方法 | 第26-30页 |
| 2.1 小鼠 ONC 模型制备 | 第26页 |
| 2.2 western blot 实验 | 第26-28页 |
| 2.3 QPCR 实验 | 第28-29页 |
| 2.4 小鼠闪光视觉诱发电位（F-VEP）检测 | 第29-30页 |
| 2.5 SPSS16.0 处理分析数据 | 第30页 |
| 3 实验结果 | 第30-33页 |
| 3.1 ONC 后情况 | 第30页 |
| 3.2 AR 蛋白表达变化 | 第30-31页 |
| 3.3 AR 基因 QPCR 结果 | 第31-32页 |
| 3.4 视觉电生理 F-VEP | 第32-33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 实验二 AR 敲除促进视神经再生及可能机制 | 第35-44页 |
| 引言 | 第35-36页 |
| 1 材料 | 第36-37页 |
| 1.1 实验动物 | 第36页 |
| 1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 1.3 主要仪器 | 第36页 |
| 1.4 实验抗体 | 第36-37页 |
| 2 实验方法 | 第37-39页 |
| 2.1 小鼠 ONC 模型（同实验一） | 第37页 |
| 2.2 小鼠视神经灌注、取材（组织准备） | 第37页 |
| 2.3 获取 AR-/-YFP 小鼠 | 第37-38页 |
| 2.4 CTB 追踪再生神经纤维 | 第38页 |
| 2.5 免疫荧光组织化学染色 | 第38-39页 |
| 2.6 western Blot(同实验一) | 第39页 |
| 2.7 统计学分析（同实验一） | 第39页 |
| 3 结果 | 第39-42页 |
| 3.1 AR 基因敲除后对视网膜节细胞存活的影响 | 第39-40页 |
| 3.2 AR 基因敲除对 ONC 后视神经纤维再生的影响 | 第40-41页 |
| 3.3 AR 基因敲除对 ONC 后巨噬细胞极化的影响 | 第41-42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| 小结 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-53页 |
| 个人简历和研究成果 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
