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新型RIP3激活剂CY6通过缺陷型自噬激活RIP3-P62复合体诱导胃癌细胞程序性坏死

摘要第4-6页
Abstract第6-8页
英文缩略词表第12-14页
1 绪论第14-29页
    1.1 引言第14页
    1.2 细胞凋亡第14-15页
    1.3 自噬第15-18页
        1.3.1 自噬的机制第15-17页
        1.3.2 自噬调节器P第17-18页
    1.4 程序性坏死第18-23页
        1.4.1 程序性坏死的机制第18-20页
        1.4.2 受体相互作用蛋白RIP第20-23页
    1.5 细胞凋亡与坏死的相互作用第23-24页
    1.6 细胞坏死与自噬的相互作用第24-25页
    1.7 JaspineB衍生物CY第25-26页
    1.8 本课题研究的目的和意义第26-29页
2 材料和方法第29-46页
    2.1 实验材料第29-36页
        2.1.1 实验细胞第29页
        2.1.2 实验主要试剂第29-32页
        2.1.3 主要仪器设备第32-33页
        2.1.4 试剂的配制第33-36页
    2.2 细胞培养第36-38页
        2.2.1 贴壁细胞培养第36-37页
        2.2.2 传代第37页
        2.2.3 计数第37-38页
    2.3 细胞死亡率检测(MTT法)第38-39页
    2.4 细胞形态变化检测第39-40页
        2.4.1 Hoechst33342/PI细胞凋亡与坏死双染法第39页
        2.4.2 LC3免疫荧光第39-40页
    2.5 细胞全蛋白抽提第40页
    2.6 BCA法测定蛋白浓度第40-41页
    2.7 蛋白免疫印迹实验第41-42页
    2.8 蛋白免疫共沉淀实验第42页
    2.9 RIP3敲除细胞系构建第42-44页
        2.9.1 引物第42页
        2.9.2 质粒转化及筛选第42-43页
        2.9.3 慢病毒包装第43-44页
        2.9.4 筛选RIP3-/-胃癌MGC803细胞株第44页
    2.10 动物实验第44-45页
    2.11 统计学分析第45-46页
3 结果第46-59页
    3.1 JaspineB衍生物CY6对胃癌细胞的增值抑制作用第46-47页
    3.2 CY6诱导胃癌细胞程序性坏死第47-49页
        3.2.1 Hoechst33342/PI荧光双染色检测CY6作用后MGC803细胞的形态变化第47-48页
        3.2.2 CY6上调程序性坏死相关蛋白的表达第48页
        3.2.3 CY6诱导MGC803细胞坏死体的形成第48-49页
    3.3 CY6诱导胃癌细胞自噬作用第49-52页
        3.3.1 显微镜观察细胞形态第49页
        3.3.2 CY6调控自噬相关蛋白的表达第49-50页
        3.3.3 CY6抑制Beclin-1与Bcl-2/Bcl-xl复合体的形成第50-51页
        3.3.4 自噬抑制剂Baf-A1有效阻断CY6诱导的胃癌细胞死亡第51-52页
    3.4 CY6诱导胃癌细胞发生缺陷型自噬第52-53页
    3.5 CY6促进RIP3与P62的结合第53-54页
    3.6 RIP3是CY6诱导胃癌细胞死亡的主要靶点第54-56页
        3.6.1 RIP1抑制剂Nec-1对CY6诱导的胃癌细胞死亡的影响第54-55页
        3.6.2 RIP3KD完全阻断CY6诱导的胃癌细胞死亡第55页
        3.6.3 RIP3调节CY6诱导的胃癌细胞自噬第55-56页
    3.7 CY6在体内诱导程序性坏死和自噬第56-59页
        3.7.1 CY6在体内抑制肿瘤的生长第56-57页
        3.7.2 CY6在体内诱导程序性坏死和自噬第57-59页
4 讨论第59-63页
    4.1 RIP3参与CY6作用于胃癌细胞的动态过程第59-60页
    4.2 CY6诱导胃癌细胞程序性坏死第60页
    4.3 P62参与CY6作用于胃癌细胞的过程第60-61页
    4.4 CY6诱导胃癌细胞自噬第61-63页
5 结论第63-64页
参考文献第64-76页
个人简历第76-77页
在学期间发表的学术论文与研究成果第77-78页
致谢第78页

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