| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 英文缩写表 | 第5-6页 |
| 目录 | 第6-8页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 第一章 综述 | 第9-16页 |
| 1.1 苯并芘的结构与理化性质 | 第9页 |
| 1.2 苯并花的毒理 | 第9-10页 |
| 1.3 苯并芘的来源与危害 | 第10页 |
| 1.4 苯并芘残留检测方法的研究进展 | 第10-14页 |
| 1.4.1 苯并芘残留的提取方法 | 第10-12页 |
| 1.4.2 苯并芘残留的检测方法 | 第12-14页 |
| 1.5 本论文的研究目的与意义 | 第14-16页 |
| 第二章 苯并芘人工抗原的合成与鉴定 | 第16-23页 |
| 2.1 实验材料、试剂与仪器 | 第16-17页 |
| 2.1.1 实验材料与试剂 | 第16页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第16-17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-19页 |
| 2.2.1 苯并芘半抗原(Bap=0)的合成 | 第17-18页 |
| 2.2.2 苯并芘全抗原的偶联 | 第18-19页 |
| 2.2.3 苯并芘人工抗原的鉴定与偶联比的测定 | 第19页 |
| 2.3 结果与分析 | 第19-21页 |
| 2.3.1 苯并芘半抗原中间产物6-碘苯并芘的鉴定 | 第19页 |
| 2.3.2 苯并芘半抗原(Bap=0)的鉴定 | 第19-21页 |
| 2.4 本章小结 | 第21-23页 |
| 第三章 苯并芘小分子间接竞争ELISA检测方法的建立 | 第23-40页 |
| 3.1 实验材料、试剂与仪器 | 第24页 |
| 3.1.1 实验材料与试剂 | 第24页 |
| 3.1.2 主要溶液的配制 | 第24页 |
| 3.1.3 仪器和设备 | 第24页 |
| 3.2 实验方法 | 第24-31页 |
| 3.2.1 酶标板(96孔)均一性的测定 | 第24-25页 |
| 3.2.2 苯并芘单克隆抗体效价的测定 | 第25页 |
| 3.2.3 抗原包被浓度和单抗稀释倍数的方阵滴定 | 第25-26页 |
| 3.2.4 封闭液的选择 | 第26页 |
| 3.2.5 酶标山羊抗鼠(酶标二抗)稀释倍数的确定 | 第26-27页 |
| 3.2.6 洗涤液(PBST)浓度的确定 | 第27-28页 |
| 3.2.7 反应体系中pH的优化 | 第28页 |
| 3.2.8 反应体系中盐离子的优化 | 第28-29页 |
| 3.2.9 反应体系中甲醇浓度的优化 | 第29页 |
| 3.2.10 苯并芘小分子间接竞争ELISA标准曲线的建立 | 第29-30页 |
| 3.2.11 交叉反应 | 第30页 |
| 3.2.12 实际水样品的检测 | 第30-31页 |
| 3.2.13 加标回收实验 | 第31页 |
| 3.3 结果与分析 | 第31-39页 |
| 3.3.1 酶标板均一性的评价 | 第31页 |
| 3.3.2 苯并芘单克隆抗体的效价测定结果 | 第31-32页 |
| 3.3.3 方阵滴定法确定抗原包被的浓度及单抗稀释的倍数 | 第32页 |
| 3.3.4 不同封闭液对ELISA实验的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.5 不同酶标羊抗鼠(酶标二抗)稀释倍数对ELISA实验的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.6 不同洗涤液(PBST)浓度对ELISA实验的影响 | 第34页 |
| 3.3.7 pH变化对ELISA实验的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.8 盐离子对ELISA实验的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.9 甲醇浓度对ELISA实验的影响 | 第36页 |
| 3.3.10 苯并芘小分子的间接竞争ELISA标准曲线 | 第36-37页 |
| 3.3.11 苯并芘单克隆抗体的特异性 | 第37-38页 |
| 3.3.12 实际水样品的检测结果 | 第38-39页 |
| 3.3.13 加标回收率 | 第39页 |
| 3.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 结论与展望 | 第40-42页 |
| 4.1 结论 | 第40页 |
| 4.2 展望 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 附录 | 第47-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 研究生期间发表论文 | 第53页 |
