摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第一章 前言 | 第13-23页 |
1 藻酸双酯钠 | 第13-18页 |
1.1 藻酸双酯钠的来源 | 第13-15页 |
1.2 藻酸双酯钠的活性及其临床应用 | 第15-17页 |
1.3 藻酸双酯钠的质量控制 | 第17-18页 |
2 褐藻寡糖 | 第18-22页 |
2.1 寡糖的制备 | 第18-20页 |
2.2 褐藻寡糖的活性 | 第20-22页 |
3 本论文的立题依据,意义及内容 | 第22-23页 |
第二章 柱前衍生高效液相色谱法测定PSS的糖醛酸组成 | 第23-40页 |
引言 | 第23页 |
1 材料和仪器 | 第23-24页 |
1.1 实验材料 | 第23-24页 |
1.2 实验仪器 | 第24页 |
2 实验方法 | 第24-29页 |
2.1 色谱条件优化 | 第24-25页 |
2.2 样品的降解 | 第25-26页 |
2.3 样品的衍生 | 第26-27页 |
2.4 样品的检测 | 第27页 |
2.5 方法学验证 | 第27-28页 |
2.6 H~1 -NMR分析 | 第28-29页 |
3 实验结果与讨论 | 第29-39页 |
3.1 液相条件的优化 | 第29-30页 |
3.2 样品降解方法及最佳降解条件分析 | 第30-32页 |
3.3 样品的衍生结果分析 | 第32页 |
3.4 样品的检测结果分析 | 第32-34页 |
3.5 方法学验证结果 | 第34-36页 |
3.6 H~1 -NMR分析实验结果 | 第36-39页 |
4 本章小结 | 第39-40页 |
第三章 柱前衍生高效液相色谱法测定PSS含量 | 第40-53页 |
引言 | 第40页 |
1 实验材料和仪器 | 第40-41页 |
1.1 实验材料 | 第40-41页 |
1.2 实验仪器 | 第41页 |
2 实验方法 | 第41-43页 |
2.1 PSS的降解 | 第41页 |
2.2 PSS降解液的柱前衍生 | 第41-42页 |
2.3 样品检测 | 第42页 |
2.4 方法学考察 | 第42-43页 |
3 实验结果与讨论 | 第43-52页 |
3.1 降解方法对含量计算的影响 | 第43-47页 |
3.2 样品测定 | 第47-50页 |
3.3 方法学考察 | 第50-52页 |
4 本章小结 | 第52-53页 |
第四章 PSS分子量测定及其影响因素考察 | 第53-61页 |
引言 | 第53页 |
1 材料和仪器 | 第53-54页 |
1.1 实验材料及试剂 | 第53页 |
1.2 实验仪器 | 第53-54页 |
2 实验方法 | 第54-55页 |
2.1 色谱条件 | 第54页 |
2.2 标准曲线的绘制及十八角激光检测标准品验证 | 第54页 |
2.3 分子量测定结果影响因素考察 | 第54-55页 |
3 实验结果与讨论 | 第55-59页 |
3.1 十八角激光散射法验证标准品及标准曲线的绘制 | 第55-56页 |
3.2 分子量测定结果的影响因素考察 | 第56-59页 |
4 本章小结 | 第59-61页 |
第五章 不同分子量PSS片段及寡糖的制备 | 第61-76页 |
引言 | 第61页 |
1 材料与仪器 | 第61-62页 |
1.1 实验材料及试剂 | 第61-62页 |
1.2 实验仪器 | 第62页 |
2 实验方法 | 第62-64页 |
2.1 凝胶层析法制备不同分子量的PSS组分 | 第62-63页 |
2.2 固相酸解法制备PSS寡糖 | 第63页 |
2.3 PSS寡糖的质谱分析 | 第63-64页 |
3 实验结果 | 第64-75页 |
3.1 不同分子量PSS组分的分离 | 第64页 |
3.2 PSS寡糖的制备 | 第64-65页 |
3.3 PSS寡糖的质谱分析结果 | 第65-75页 |
4 本章小结 | 第75-76页 |
第六章 抗凝活性和FGF-2 结合活性的测定 | 第76-87页 |
引言 | 第76页 |
1 材料与仪器 | 第76页 |
2 实验方法 | 第76-78页 |
2.1 抗凝活性测定 | 第76-77页 |
2.2 FGF/FGFR介导的BAF 3 细胞增殖实验结果 | 第77-78页 |
3 实验结果 | 第78-85页 |
3.1 抗凝实验结果 | 第78-82页 |
3.2 FGF/FGFR介导的BAF3 细胞增殖实验结果 | 第82-85页 |
4 本章小结 | 第85-87页 |
结语 | 第87-89页 |
创新点 | 第89-90页 |
参考文献 | 第90-97页 |
致谢 | 第97-98页 |
个人简历 | 第98页 |
参与发表的学术论文 | 第98-99页 |