| 中英文名词术语对照 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第一章 绪论 | 第12-21页 |
| 1 花色苷研究简介 | 第12-14页 |
| 1.1 花色苷的分类与结构 | 第12-13页 |
| 1.2 花色苷的生理机能 | 第13-14页 |
| 1.2.1 预防糖尿病 | 第13页 |
| 1.2.2 预防心血管疾病 | 第13-14页 |
| 1.2.3 保护视力 | 第14页 |
| 1.2.4 预防肥胖 | 第14页 |
| 2 人血清蛋白与糖化血清蛋白简介 | 第14-15页 |
| 2.1 人血清蛋白的结构 | 第14-15页 |
| 2.2 人糖化血清蛋白的形成 | 第15页 |
| 3 多光谱技术对人血清蛋白与小配体结合作用机制的研究概述 | 第15-18页 |
| 3.1 紫外-可见分光光度法 | 第15-16页 |
| 3.2 荧光分光光度法 | 第16页 |
| 3.3 圆二色谱法 | 第16-17页 |
| 3.4 傅里叶红外光谱法 | 第17页 |
| 3.5 其他技术手段 | 第17-18页 |
| 4 花色苷与蛋白质相互作用研究进展 | 第18页 |
| 5 本文的选题意义、研究内容和创新点 | 第18-21页 |
| 第二章 多光谱和计算机模拟技术研究矢车菊-3-o-葡萄糖苷与人血清蛋白、糖化血清蛋白相互作用机理 | 第21-41页 |
| 1 引言 | 第21页 |
| 2 材料与仪器方法 | 第21-24页 |
| 2.1 试剂 | 第21-22页 |
| 2.2 仪器 | 第22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.3.1 荧光光谱技术 | 第22-23页 |
| 2.3.2 时间分辨荧光 | 第23页 |
| 2.3.3 紫外可见吸收光谱 | 第23页 |
| 2.3.4 圆二色谱 | 第23-24页 |
| 2.3.5 傅里叶转移红外光谱 | 第24页 |
| 2.3.6 分子对接 | 第24页 |
| 3 实验结果与分析 | 第24-39页 |
| 3.1 C3G对HSA、gHSA紫外光谱和荧光光谱的影响 | 第24-26页 |
| 3.2 荧光猝灭机制 | 第26-28页 |
| 3.3 结合常数与结合位点数的确定 | 第28-29页 |
| 3.4 热力学参数的确定 | 第29页 |
| 3.5 非辐射能量转移 | 第29-31页 |
| 3.6 C3G对HSA,gHSA二级结构的影响 | 第31-38页 |
| 3.6.1 HSA-C3G、gHSA-C3G体系的同步荧光光谱 | 第31-33页 |
| 3.6.2 HSA-C3G、gHSA-C3G体系的荧光激发发射矩阵光谱 | 第33页 |
| 3.6.3 HSA-C3G、gHSA-C3G体系的时间分辨荧光光谱 | 第33-35页 |
| 3.6.4 HSA-C3G、gHSA-C3G体系的红边激发位移 | 第35页 |
| 3.6.5 HSA-C3G、gHSA-C3G体系的傅里叶变换红外光谱 | 第35-36页 |
| 3.6.6 HSA-C3G、gHSA-C3G体系的pH依赖性 | 第36-37页 |
| 3.6.7 HSA-C3G、gHSA-C3G体系的圆二色谱(CD) | 第37-38页 |
| 3.7 分子对接模型研究C3G与HSA、gHSA的结合作用 | 第38-39页 |
| 4 本章结论 | 第39-41页 |
| 第三章 多光谱和显微镜技术研究矢车菊-3-O-葡萄糖苷对人血清蛋白糖化的影响 | 第41-63页 |
| 1 引言 | 第41页 |
| 2 材料与仪器方法 | 第41-44页 |
| 2.1 试剂 | 第41页 |
| 2.2 仪器 | 第41-42页 |
| 2.3 血清蛋白晚期糖化终产物(AGE-HSA)的制备与纯化[22,24,43] | 第42页 |
| 2.4 实验方法 | 第42-44页 |
| 2.4.1 紫外可见吸收光谱 | 第42-43页 |
| 2.4.2 荧光光谱技术 | 第43页 |
| 2.4.3 傅里叶转移红外(FTIR)光谱 | 第43页 |
| 2.4.4 圆二色谱(CD) | 第43页 |
| 2.4.5 透射电子显微镜(TEM) | 第43页 |
| 2.4.6 原子力显微镜(AFM) | 第43-44页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第44-62页 |
| 3.1 C3G在缓冲液中稳定性的测定 | 第44-45页 |
| 3.2 果糖胺吸光度与AGEs荧光强度测定 | 第45-48页 |
| 3.3 透射电子显微镜(TEM)观察葡萄糖与C3G对HSA的影响 | 第48-50页 |
| 3.4 HSA中色氨酸(Trp)与酪氨酸(Tyr)残基吸光度值的测定 | 第50-51页 |
| 3.5 Trp与Tyr周围荧光强度变化的测定 | 第51-53页 |
| 3.6 同步荧光光谱测定Trp与Tyr残基荧光强度变化 | 第53-54页 |
| 3.7 共振光散射(RLS)测定单纯HSA在孵化过程中自身结构的变化 | 第54-56页 |
| 3.8 傅里叶红外光谱(FTIR)测定不同浓度C3G的条件下HSA结构的变化 | 第56-57页 |
| 3.9 荧光EEM光谱测定在不同浓度C3G体系中HSA结构的变化 | 第57-59页 |
| 3.10 圆二色谱(CD)测定在不同浓度C3G的条件下HSA结构的变化 | 第59-60页 |
| 3.11 原子力显微镜(AFM)测定在存在C3G与葡萄糖的条件下HSA表面形态结构的变化 | 第60-62页 |
| 4 本章结论 | 第62-63页 |
| 第四章 结合光谱和显微镜技术比较研究矢车菊-3-O-葡萄糖苷、飞燕草素-3-O-葡萄糖苷与天竺葵素-3-O-葡萄糖苷对人血清蛋白糖化的影响 | 第63-76页 |
| 1 引言 | 第63页 |
| 2 材料与仪器方法 | 第63-65页 |
| 2.1 试剂 | 第63页 |
| 2.2 仪器 | 第63-64页 |
| 2.3 实验方法 | 第64-65页 |
| 2.3.1 紫外吸光光度法 | 第64页 |
| 2.3.2 荧光分光光度法 | 第64页 |
| 2.3.3 圆二色谱(CD) | 第64页 |
| 2.3.4 原子力显微镜 | 第64-65页 |
| 2.3.5 DPPH法测定三种花色苷的抗氧化性 | 第65页 |
| 3 结果与讨论 | 第65-74页 |
| 3.1 紫外吸光光度法测定花色苷对果糖胺生成的影响 | 第65-66页 |
| 3.2 荧光光度法测定花色苷对AGEs生成的影响 | 第66-67页 |
| 3.3 紫外吸光光度法测定花色苷对HSA的影响 | 第67-70页 |
| 3.4 荧光分光光度法测定花色苷对HSA的影响 | 第70-71页 |
| 3.5 圆二色谱法测定三种花色苷对HSA二级结构的影响 | 第71-72页 |
| 3.6 原子力显微镜测定花色苷对HSA表面形态结构的变化 | 第72-74页 |
| 3.7 DPPH法测定三种花色苷的抗氧化性 | 第74页 |
| 4 结论 | 第74-76页 |
| 第五章 结论 | 第76-78页 |
| 第六章 展望 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-85页 |
| 攻读硕士期间发表论文情况 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
