| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 引言 | 第10-23页 |
| 1.1 SigmaB在环境压力胁迫中的作用 | 第10-14页 |
| 1.1.1 细菌生长过程中σ~B因子的转录表达与活性的关系 | 第12页 |
| 1.1.2 σ~B在耐受酸碱环境中的作用 | 第12-13页 |
| 1.1.3 σ~B在耐受渗透压环境中的作用 | 第13-14页 |
| 1.1.4 σ~B在耐受低温环境中的作用 | 第14页 |
| 1.2 PrfA在LM毒力基因表达调控中的作用 | 第14-17页 |
| 1.2.1 PrfA因子的结构 | 第15页 |
| 1.2.2 PrfA蛋白调控毒力基因表达的机制 | 第15-17页 |
| 1.3 Sigma B与PrfA的相互作用以及与其他调控因子之间的关系 | 第17-19页 |
| 1.3.1 σ~B与PrfA的相互作用 | 第17-18页 |
| 1.3.2 LM中与环境胁迫有关的其他调控因子 | 第18页 |
| 1.3.3 σ~B及PrfA与LM中其它调控因子之间的调控网络 | 第18-19页 |
| 1.4 LM蛋白质组学的研究 | 第19-22页 |
| 1.4.1 蛋白质组学的概念 | 第19页 |
| 1.4.2 蛋白质组学主要研究技术 | 第19-21页 |
| 1.4.3 LM蛋白质组学研究进展 | 第21-22页 |
| 1.5 结论与展望 | 第22-23页 |
| 第二章 单核细胞增生李斯特菌总蛋白质组二维电泳条件的建立和优化 | 第23-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-26页 |
| 2.1.1 菌株 | 第23页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 主要仪器设备及软件 | 第24页 |
| 2.1.4 常用试剂配制 | 第24-26页 |
| 2.2 方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 菌株及培养液 | 第26页 |
| 2.2.2 EGD总蛋白质样品制备 | 第26页 |
| 2.2.3 蛋白样品浓度测定 | 第26-27页 |
| 2.2.4 双向电泳 | 第27-29页 |
| 2.2.5 凝胶图像分析和统计学处理 | 第29页 |
| 2.3 结果 | 第29-31页 |
| 2.3.1 EGD总蛋白制备方法的比较 | 第29-30页 |
| 2.3.2 蛋白样品不同上样量的比较 | 第30-31页 |
| 2.4 讨论 | 第31-34页 |
| 第三章 单核细胞增生李斯特菌耐受肠道胆汁酸盐环境机制的蛋白质组学研究 | 第34-82页 |
| 3.1 实验材料 | 第35-36页 |
| 3.1.1 菌株 | 第35页 |
| 3.1.2 主要仪器及软件 | 第35-36页 |
| 3.2 方法 | 第36-37页 |
| 3.2.1 菌体的培养与收集 | 第36页 |
| 3.2.2 LM总蛋白的提取 | 第36页 |
| 3.2.3 双向电泳 | 第36页 |
| 3.2.4 差异点分析 | 第36-37页 |
| 3.3 结果 | 第37-78页 |
| 3.3.1 EGD在不同浓度胆汁酸盐刺激下总蛋白表达图谱的比较 | 第37-48页 |
| 3.3.2 EGDΔsigB在不同浓度胆汁酸盐刺激下总蛋白表达图谱的比较 | 第48-60页 |
| 3.3.3 EGDΔprfA在不同浓度胆汁酸盐刺激下的总蛋白表达图谱的比较 | 第60-69页 |
| 3.3.4 EGDΔprfAΔsigB在不同浓度胆汁酸盐刺激下的总蛋白表达图谱的比较 | 第69-78页 |
| 3.4 讨论 | 第78-81页 |
| 3.5 小结 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-89页 |
| 在校期间发表的论文、科研成果等 | 第89-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 英文论文 | 第92-97页 |
