| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 绪论 | 第13-76页 |
| 1.1 样品前处理的研究概况 | 第13-14页 |
| 1.2 固相微萃取 | 第14-32页 |
| 1.2.1 SPME 概述 | 第14页 |
| 1.2.2 SPME 基本理论 | 第14-16页 |
| 1.2.3 SPME 萃取模式 | 第16-24页 |
| 1.2.3.1 Fiber SPME | 第16-19页 |
| 1.2.3.2 In-tube SPME | 第19-23页 |
| 1.2.3.3 SBSE | 第23-24页 |
| 1.2.4 影响 SPME 萃取效率的因素 | 第24-25页 |
| 1.2.4.1 萃取涂层 | 第24-25页 |
| 1.2.4.2 萃取温度与时间 | 第25页 |
| 1.2.4.3 离子强度和 pH | 第25页 |
| 1.2.4.4 其它因素的影响 | 第25页 |
| 1.2.5 SPME 的应用及其进展 | 第25-32页 |
| 1.2.5.1 SPME 在环境分析中的应用 | 第25-26页 |
| 1.2.5.2 SPME 在食品分析中的应用 | 第26页 |
| 1.2.5.3 SPME 在生物及医药分析中的应用 | 第26-32页 |
| 1.3 液相微萃取 | 第32-51页 |
| 1.3.1 LPME 概述 | 第32-33页 |
| 1.3.2 LPME 基本理论 | 第33-34页 |
| 1.3.3 LPME 萃取模式 | 第34-46页 |
| 1.3.3.1 SD-LPME | 第34-39页 |
| 1.3.3.2 HF-LPME | 第39-42页 |
| 1.3.3.3 DLLME | 第42-46页 |
| 1.3.4 影响 LPME 萃取效率的因素 | 第46-47页 |
| 1.3.4.1 有机溶剂类型与液滴体积 | 第46页 |
| 1.3.4.2 搅拌速率 | 第46页 |
| 1.3.4.3 萃取时间 | 第46-47页 |
| 1.3.4.4 离子强度 | 第47页 |
| 1.3.4.5 样品溶液的 pH | 第47页 |
| 1.3.4.6 萃取温度 | 第47页 |
| 1.3.5 LPME 的应用及其进展 | 第47-51页 |
| 1.3.5.1 离子对萃取 | 第48页 |
| 1.3.5.2 络合反应 | 第48-49页 |
| 1.3.5.3 化学衍生 | 第49-50页 |
| 1.3.5.4 相转移催化 | 第50页 |
| 1.3.5.5 特殊亲和反应 | 第50-51页 |
| 1.4 论文选题依据、意义及研究内容 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-76页 |
| 第二章 聚合物整体柱固相微萃取与液相色谱-质谱联用测定可食用动物性食品中多种苯并咪唑类药物残留 | 第76-99页 |
| 2.1 前言 | 第76-77页 |
| 2.2 实验部分 | 第77-82页 |
| 2.2.1 试剂与材料 | 第77-78页 |
| 2.2.2 Poly (MAA-co-EGDMA)整体柱的制备 | 第78-80页 |
| 2.2.3 仪器设备及分析条件 | 第80-81页 |
| 2.2.4 口饲 ABZ 的鸡蛋样品的采集 | 第81页 |
| 2.2.5 样品制备 | 第81页 |
| 2.2.6 PMME 操作步骤 | 第81-82页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第82-90页 |
| 2.3.1 PMME 条件的优化 | 第82-86页 |
| 2.3.1.1 样品溶液的 pH | 第82-83页 |
| 2.3.1.2 萃取容量 | 第83-84页 |
| 2.3.1.3 清洗和解吸溶剂 | 第84页 |
| 2.3.1.4 吸附和解吸流速 | 第84-85页 |
| 2.3.1.5 质谱条件的优化 | 第85-86页 |
| 2.3.2 可食用动物性食品样品的分析 | 第86-90页 |
| 2.3.2.1 线性方程和检出限 | 第86页 |
| 2.3.2.2 方法比较 | 第86-87页 |
| 2.3.2.3 精密度和准确度 | 第87-88页 |
| 2.3.2.4 口饲 ABZ 的母鸡所产鸡蛋中 ABZ 及代谢产物的测定 | 第88-90页 |
| 2.4 结论 | 第90-95页 |
| 参考文献 | 第95-99页 |
| 第三章 磁固相萃取与毛细管电泳场放大进样技术联用测定猪组织样品中多种苯并咪唑类药物残留 | 第99-122页 |
| 3.1 前言 | 第99-101页 |
| 3.2 实验部分 | 第101-104页 |
| 3.2.1 试剂与材料 | 第101-102页 |
| 3.2.2 仪器及分析条件 | 第102页 |
| 3.2.3 磁性材料的制备 | 第102-103页 |
| 3.2.3.1 磁流体的制备 | 第103页 |
| 3.2.3.2 核壳材料的制备及修饰 | 第103页 |
| 3.2.3.3 磁性材料的制备 | 第103页 |
| 3.2.4 样品制备 | 第103-104页 |
| 3.2.5 磁固相萃取步骤 | 第104页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第104-119页 |
| 3.3.1 毛细管电泳分离条件的优化 | 第104-107页 |
| 3.3.2 场放大样品堆积条件的优化 | 第107-110页 |
| 3.3.3 磁固相萃取条件的优化 | 第110-114页 |
| 3.3.3.1 吸附剂用量 | 第110-111页 |
| 3.3.3.2 样品溶液的 pH | 第111-112页 |
| 3.3.3.3 萃取时间 | 第112-113页 |
| 3.3.3.4 解吸条件 | 第113-114页 |
| 3.3.4 猪组织样品的分析 | 第114-119页 |
| 3.4 结论 | 第119页 |
| 参考文献 | 第119-122页 |
| 第四章 基于分子络合-分散液液微萃取技术及其在水溶液中极性化合物分析的应用 | 第122-142页 |
| 4.1 前言 | 第122-123页 |
| 4.2 实验部分 | 第123-126页 |
| 4.2.1 试剂与材料 | 第123-124页 |
| 4.2.2 样品制备 | 第124页 |
| 4.2.3 萃取步骤 | 第124-125页 |
| 4.2.4 高效液相色谱系统 | 第125-126页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第126-136页 |
| 4.3.1 萃取机理 | 第126-127页 |
| 4.3.2 萃取装置 | 第127页 |
| 4.3.3 萃取剂的比较 | 第127-128页 |
| 4.3.4 分散液液微萃取条件的优化 | 第128-130页 |
| 4.3.4.1 萃取剂的体积 | 第128页 |
| 4.3.4.2 分散剂的种类和体积 | 第128-129页 |
| 4.3.4.3 样品溶液的 pH | 第129-130页 |
| 4.3.3.4 离子强度和萃取时间 | 第130页 |
| 4.3.5 分析方法性能的评价 | 第130-134页 |
| 4.3.6 实际样品分析 | 第134-136页 |
| 4.4 结论 | 第136页 |
| 参考文献 | 第136-142页 |
| 第五章 固相萃取与基于分子络合物-分散液液微萃取相结合与高效液相色谱联用测定椰子汁中的酸性植物激素 | 第142-161页 |
| 5.1 前言 | 第142-144页 |
| 5.2 实验部分 | 第144-146页 |
| 5.2.1 试剂与材料 | 第144页 |
| 5.2.2 样品制备 | 第144-145页 |
| 5.2.3 萃取步骤 | 第145页 |
| 5.2.4 高效液相色谱系统 | 第145-146页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第146-155页 |
| 5.3.1 固相萃取条件优化 | 第146-148页 |
| 5.3.1.1 样品溶液的流速 | 第146-147页 |
| 5.3.1.2 穿透体积 | 第147页 |
| 5.3.1.3 解吸溶液的种类和体积 | 第147页 |
| 5.3.1.4 样品溶液 pH | 第147-148页 |
| 5.3.2 分散液液微萃取条件优化 | 第148-152页 |
| 5.3.2.1 萃取剂的种类和体积 | 第148-149页 |
| 5.3.2.2 分散剂的类型和体积 | 第149-150页 |
| 5.3.2.3 溶液的 pH | 第150-151页 |
| 5.3.2.4 离子强度 | 第151-152页 |
| 5.3.3 分析方法性能的评价 | 第152-153页 |
| 5.3.4 实际样品分析 | 第153-155页 |
| 5.4 小结 | 第155页 |
| 参考文献 | 第155-161页 |
| 第六章 总结与展望 | 第161-163页 |
| 附录 | 第163-164页 |
| 致谢 | 第164-165页 |
| 附件 | 第165-167页 |
