| 中文摘要 | 第1-15页 |
| ABSTRACT | 第15-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-37页 |
| ·靶向给药系统的概述 | 第19-22页 |
| ·靶向材料 | 第22-26页 |
| ·物理化学靶向给药系统的靶向材料 | 第22-23页 |
| ·主动靶向给药系统的靶向材料 | 第23-26页 |
| ·载体材料 | 第26-29页 |
| ·非生物降解材料 | 第27页 |
| ·生物降解材料 | 第27-29页 |
| ·抗癌药物 | 第29-30页 |
| ·天然抗癌药物 | 第29-30页 |
| ·合成化学抗癌药物 | 第30页 |
| ·金属配合物 | 第30页 |
| ·制备技术 | 第30-33页 |
| ·机械粉碎法 | 第31页 |
| ·物理分散法 | 第31-32页 |
| ·化学合成法 | 第32-33页 |
| ·存在问题和发展趋势 | 第33-34页 |
| ·本论文的立题依据与研究意义 | 第34-36页 |
| ·本论文的创新点 | 第36-37页 |
| 第二章 FA-PEG-P(HB-HO)载体材料的制备及理化性质检测 | 第37-45页 |
| ·材料 | 第38-39页 |
| ·主要试剂 | 第38-39页 |
| ·主要仪器 | 第39页 |
| ·方法 | 第39-41页 |
| ·FA-PEG-NH_2的合成 | 第39页 |
| ·FA-PEG-NH_2中FA含量和α-NH_2含量的测定 | 第39-40页 |
| ·FA-PEG-P(HB-HO)的合成 | 第40页 |
| ·FA-PEG-P(HB-HO)的表征 | 第40-41页 |
| ·结果与讨论 | 第41-44页 |
| ·FA-PEG-NH_2的合成结果 | 第41-42页 |
| ·FA-PEG-NH_2中FA含量和α-NH_2含量的测定结果 | 第42页 |
| ·FA-PEG-P(HB-HO)的合成结果 | 第42页 |
| ·FA-PEG-P(HB-HO)的表征结果 | 第42-44页 |
| ·结论 | 第44-45页 |
| 第三章 叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的制备技术及基本特性研究 | 第45-58页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·主要试剂 | 第46页 |
| ·主要仪器 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-49页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)空白纳米粒制备方法的筛选 | 第46-47页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的制备及工艺优化 | 第47页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的基本特性研究 | 第47-49页 |
| ·结果与讨论 | 第49-56页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)空白纳米粒制备方法的筛选结果 | 第49-50页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的制备工艺 | 第50-51页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的基本特性及稳定性考察结果 | 第51-56页 |
| ·结论 | 第56-58页 |
| 第四章 叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的体外细胞试验 | 第58-73页 |
| ·材料 | 第58-59页 |
| ·主要试剂 | 第58页 |
| ·主要仪器 | 第58页 |
| ·细胞株 | 第58-59页 |
| ·RPMI1640培养液配制 | 第59页 |
| ·细胞培养用PBS的配制 | 第59页 |
| ·胰蛋白酶液的配制 | 第59页 |
| ·MTT溶液的配制 | 第59页 |
| ·方法 | 第59-62页 |
| ·HeLa细胞的复苏与体外培养 | 第59-60页 |
| ·MTT法检测叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的细胞毒性作用 | 第60页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的体外细胞摄取试验 | 第60-61页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒对HeLa细胞凋亡的影响 | 第61-62页 |
| ·结果与讨论 | 第62-72页 |
| ·HeLa细胞生长曲线 | 第62页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的细胞毒性试验结果 | 第62-65页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的体外细胞摄取试验结果 | 第65-67页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒对HeLa细胞凋亡的影响结果 | 第67-72页 |
| ·结论 | 第72-73页 |
| 第五章 叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒在荷瘤裸鼠体内的分布及靶向性研究 | 第73-86页 |
| ·材料 | 第73-74页 |
| ·主要试剂 | 第73页 |
| ·主要仪器 | 第73-74页 |
| ·细胞株 | 第74页 |
| ·实验动物 | 第74页 |
| ·RPMI1640培养液配制 | 第74页 |
| ·细胞培养用PBS的配制 | 第74页 |
| ·胰蛋白酶液的配制 | 第74页 |
| ·方法 | 第74-76页 |
| ·生物样品处理方法 | 第74-75页 |
| ·组织中阿霉素含量测定方法的建立 | 第75页 |
| ·荷瘤裸鼠体内组织分布及靶向性研究 | 第75-76页 |
| ·结果与讨论 | 第76-85页 |
| ·各组织中阿霉素标准曲线 | 第76-79页 |
| ·方法精密度与重现性试验结果 | 第79-81页 |
| ·方法回收率试验结果 | 第81-82页 |
| ·组织分布及靶向性研究结果 | 第82-85页 |
| ·结论 | 第85-86页 |
| 第六章 叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的抗肿瘤药效学研究 | 第86-96页 |
| ·材料 | 第86-87页 |
| ·主要试剂 | 第86页 |
| ·主要仪器 | 第86页 |
| ·细胞株 | 第86页 |
| ·实验动物 | 第86-87页 |
| ·RPMI1640培养液配制 | 第87页 |
| ·细胞培养用PBS的配制 | 第87页 |
| ·胰蛋白酶液的配制 | 第87页 |
| ·方法 | 第87-88页 |
| ·HeLa细胞的复苏与体外培养 | 第87页 |
| ·叶酸靶向P(HB-HO)载阿霉素纳米粒的抑瘤试验 | 第87-88页 |
| ·结果与讨论 | 第88-95页 |
| ·肿瘤体积生长曲线 | 第89-91页 |
| ·抑瘤率比较试验结果 | 第91-92页 |
| ·实验动物体重及脏器系数的变化 | 第92页 |
| ·肿瘤标本组织学观察结果 | 第92-95页 |
| ·结论 | 第95-96页 |
| 第七章 全文总结与展望 | 第96-98页 |
| 参考文献 | 第98-109页 |
| 附录 | 第109-111页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第111-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
| 个人简况及联系方式 | 第114-116页 |
