摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
目录 | 第7-10页 |
1 绪论 | 第10-26页 |
1.1 阿魏酸概述 | 第10-12页 |
1.1.1 阿魏酸的物化性质 | 第10页 |
1.1.2 当归、川芎和三棱三种中药简介 | 第10-11页 |
1.1.3 选用阿魏酸作为三种中药测定指标的依据 | 第11页 |
1.1.4 阿魏酸在食品、医药和化妆品中的应用 | 第11-12页 |
1.1.5 阿魏酸的来源 | 第12页 |
1.2 中药及血浆中阿魏酸含量的提取及检测方法 | 第12-14页 |
1.3 阿魏酸药代动力学研究 | 第14-15页 |
1.4 持久性有机污染物简介 | 第15-17页 |
1.4.1 持久性有机污染物特性 | 第15-16页 |
1.4.2 斯德哥尔摩公约受控POPs物质清单 | 第16页 |
1.4.3 POPs应对策略 | 第16-17页 |
1.5 有机氯和多氯联苯分子结构 | 第17-20页 |
1.6 有机氯和多氯联苯提取、净化及检测 | 第20-24页 |
1.6.1 提取、净化及检测方式概括 | 第20-22页 |
1.6.2 四种提取方式的原理 | 第22-23页 |
1.6.3 三种净化方式的原理 | 第23-24页 |
1.6.4 GC-MS/EI和GC-ECD原理 | 第24页 |
1.7 水和沉积物中的持久性有机污染物研究 | 第24-25页 |
1.8 本论文的研究意义 | 第25-26页 |
2 HPLC-DAD法用于三种中药中阿魏酸含量的测定 | 第26-36页 |
2.1 引言 | 第26页 |
2.2 实验材料 | 第26-27页 |
2.2.1 药材、试剂与器材 | 第26页 |
2.2.2 对照溶液的制备 | 第26-27页 |
2.2.3 样品的制备 | 第27页 |
2.3 条件优化 | 第27-29页 |
2.3.1 提取条件的优化 | 第27页 |
2.3.2 检测波长的选择 | 第27页 |
2.3.3 分离条件的优化 | 第27-29页 |
2.4 结果与讨论 | 第29-35页 |
2.4.1 色谱条件 | 第29-30页 |
2.4.2 流动相及梯度的选择 | 第30-33页 |
2.4.3 方法学考察 | 第33-35页 |
2.5 小结 | 第35-36页 |
3 HPLC-DAD法用于人体血浆中阿魏酸药代动力学初步研究 | 第36-42页 |
3.1 引言 | 第36页 |
3.2 实验材料 | 第36-37页 |
3.2.1 药材、试剂与器材 | 第36页 |
3.2.2 阿魏酸及内标标准溶液的制备 | 第36-37页 |
3.2.3 供试品溶液的制备 | 第37页 |
3.2.4 受试对象 | 第37页 |
3.3 血浆样品的处理 | 第37页 |
3.4 血浆中微量阿魏酸的提取方法比较 | 第37-38页 |
3.4.1 乙醇法 | 第37页 |
3.4.2 甲醇法 | 第37-38页 |
3.4.3 乙酸乙酯法 | 第38页 |
3.5 色谱条件优化 | 第38页 |
3.6 结果与讨论 | 第38-40页 |
3.6.1 色谱条件选择 | 第38-39页 |
3.6.2 不同提取方法的比较 | 第39页 |
3.6.3 方法学考察 | 第39-40页 |
3.7 HPLC-DAD法应用于人体血浆中阿魏酸药代动力学 | 第40-41页 |
3.8 小结 | 第41-42页 |
4 GC-ECD法用于珊瑚中28种POPs检测方法研究 | 第42-59页 |
4.1 引言 | 第42页 |
4.2 主要设备和材料 | 第42-43页 |
4.2.1 主要设备 | 第42页 |
4.2.2 主要材料和试剂 | 第42-43页 |
4.2.3 标准溶液的配制 | 第43页 |
4.3 实验方法的建立 | 第43-46页 |
4.3.1 提取条件的选择及优化 | 第43-44页 |
4.3.2 净化方式的选择及条件优化 | 第44-45页 |
4.3.3 检测条件的确立 | 第45-46页 |
4.4 结果与讨论 | 第46-56页 |
4.4.1 提取条件的选择及优化结果 | 第46-49页 |
4.4.2 净化方式的确定及优化结果 | 第49-53页 |
4.4.3 检测条件的确立 | 第53-55页 |
4.4.4 方法学考察 | 第55-56页 |
4.5 结果的计算和表述 | 第56-57页 |
4.6 有机氯和多氯联苯分析方法的应用 | 第57-58页 |
4.7 小结 | 第58-59页 |
结论与展望 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-65页 |
攻读学位期间主要研究成果 | 第65-66页 |
致谢 | 第66页 |