摘要 | 第10-12页 |
ABSTRACT | 第12-13页 |
符号说明 | 第14-15页 |
第一章 绪论 | 第15-26页 |
1.1 引言 | 第15页 |
1.2 树突状细胞的分布及作用 | 第15-17页 |
1.3 纳米材料与树突状细胞之间的识别 | 第17-19页 |
1.4 纳米颗粒调节树突细胞成熟 | 第19-23页 |
1.4.1 金属纳米颗粒 | 第19-21页 |
1.4.2 碳纳米材料 | 第21-22页 |
1.4.3 聚合物纳米材料 | 第22-23页 |
1.4.4 其它纳米颗粒 | 第23页 |
1.5 纳米材料影响DCs成熟的关键特征 | 第23-24页 |
1.6 纳米颗粒对DCs进行免疫调节的分子机制 | 第24-25页 |
1.7 本工作的意义和前景 | 第25-26页 |
第二章 表面亲疏水性质渐变的球形金纳米颗粒的合成和表征 | 第26-35页 |
2.1 引言 | 第26-27页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第27页 |
2.2.1 实验材料 | 第27页 |
2.2.2 实验仪器 | 第27页 |
2.3 实验方法 | 第27-31页 |
2.3.1 球形金纳米颗粒的合成 | 第27-29页 |
2.3.2 金纳米颗粒的浓度测定 | 第29-30页 |
2.3.3 金纳米颗粒的形貌表征 | 第30页 |
2.3.4 金纳米颗粒的亲疏水性指数LogP的测定 | 第30-31页 |
2.4 结果与讨论 | 第31-35页 |
2.4.1 TEM表征金纳米颗粒的形貌 | 第31-33页 |
2.4.2 金纳米颗粒的亲疏水性指数LogP结果 | 第33-35页 |
第三章 表面疏水性质渐变的球形金纳米颗粒对小鼠骨髓来源树突状细胞成熟的调节探索 | 第35-57页 |
3.1 引言 | 第35页 |
3.2 实验材料 | 第35-37页 |
3.2.1 实验动物 | 第35页 |
3.2.2 主要试剂和材料 | 第35-36页 |
3.2.3 主要仪器 | 第36-37页 |
3.3 实验方法 | 第37-45页 |
3.3.1 小鼠树突状细胞的体外诱导及培养 | 第37-39页 |
3.3.2 金纳米颗粒对细胞活力的影响 | 第39-41页 |
3.3.3 GNPs对BMDCs细胞成熟的影响 | 第41-42页 |
3.3.3.1 流式细胞仪检测GNPs对树突状细胞表型的影响 | 第41-42页 |
3.3.3.2 ELISA法检测GNPs对BMDCs分泌细胞因子的影响 | 第42页 |
3.3.4 GNPs对LPS诱导BMDCs成熟的影响 | 第42-44页 |
3.3.4.1 流式细胞仪检测树突状细胞表面成熟相关分子标志物的表达 | 第42-43页 |
3.3.4.2 GNPs对LPS刺激BMDCs分泌细胞因子的影响 | 第43-44页 |
3.3.5 树突状细胞对GNPs的摄入分析 | 第44-45页 |
3.3.7 统计处理 | 第45页 |
3.4 结果与讨论 | 第45-56页 |
3.4.1 小鼠骨髓来源树突状细胞(BMDCs)的表型鉴定 | 第45-46页 |
3.4.2 GNPs对细胞活力影响的研究 | 第46-48页 |
3.4.3 GNPs对BMDCs成熟的调节 | 第48-51页 |
3.4.3.1 GNPs的疏水性调节BMDCs表面抗原递呈分子MHC Ⅱ和共刺激分子CD86的表达 | 第48-49页 |
3.4.3.2 GNPs的疏水性调节BMDCs分泌TNF-α,IL-6和IL-12p70的水平 | 第49-51页 |
3.4.4 金纳米颗粒对LPS诱导的BMDCs成熟的影响 | 第51-53页 |
3.4.4.1 疏水性强的GNPs抑制LPS诱导的BMDCs表面标志物MHC Ⅱ及共刺激分子CD86的表达 | 第51-52页 |
3.4.4.2 疏水性强的GNPs抑制LPS诱导的BMDCs分泌细胞因子 | 第52-53页 |
3.4.5 树突状细胞对GNPs的摄入 | 第53-56页 |
3.5 结语 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
硕士期间发表论文 | 第62-63页 |
附件 | 第63页 |