| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-18页 |
| 1.1 BT、BT蛋白的简介及应用 | 第11页 |
| 1.2 转基因的研究现状 | 第11-16页 |
| 1.2.1 转基因技术的概念及技术 | 第11-12页 |
| 1.2.2 转基因作物的研究 | 第12-15页 |
| 1.2.3 转基因动物的研究 | 第15-16页 |
| 1.3 转BT基因对靶标生物的研究 | 第16页 |
| 1.4 BT基因对非靶标生物的研究 | 第16-17页 |
| 1.5 转BT基因的安全性评价的现状 | 第17-18页 |
| 第二部分 CRY1AB蛋白在褐飞虱体内随时间的传递情况及其在体内各分区的分布 | 第18-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.1 供试水稻 | 第19页 |
| 2.1.2 虫源及处理 | 第19页 |
| 2.1.3 供试水稻处理、及褐飞虱试验处理流程 | 第19-20页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第20页 |
| 2.3 实验方法 | 第20-21页 |
| 2.3.1 水稻中Bt蛋白含量的测定 | 第20页 |
| 2.3.2 褐飞虱体内可溶性总蛋白测定方法 | 第20页 |
| 2.3.3 褐飞虱体内Bt蛋白含量的测定方法 | 第20-21页 |
| 2.3.4 数据分析 | 第21页 |
| 2.4 结果与分析 | 第21-24页 |
| 2.4.1 水稻中Cry1Ab蛋白含量测定结果 | 第21页 |
| 2.4.2 褐飞虱不同部位Cry1Ab蛋白含量、可溶性总蛋白含量及不同部位Cry1Ab蛋白含量/可溶性蛋白结果 | 第21-23页 |
| 2.4.3 不同饲养时间褐飞虱体内Cry1Ab蛋白总含量变化结果 | 第23-24页 |
| 2.5 结果讨论 | 第24-25页 |
| 2.6 结论 | 第25-26页 |
| 第三部分 取食BT水稻对褐飞虱体内各种酶活性影响 | 第26-39页 |
| 3.1 实验材料 | 第27页 |
| 3.1.1 供试水稻 | 第27页 |
| 3.1.2 供试褐飞虱饲养及样品处理方法 | 第27页 |
| 3.2 主要试剂和仪器 | 第27-28页 |
| 3.3 实验方法 | 第28-29页 |
| 3.3.1 褐飞虱体内CES酶活力的测定方法 | 第28页 |
| 3.3.2 褐飞虱体内POD酶活力的测定方法 | 第28页 |
| 3.3.3 褐飞虱体内GST酶活力的测定方法 | 第28页 |
| 3.3.4 褐飞虱体内SOD酶活力的测定方法 | 第28页 |
| 3.3.5 褐飞虱体内AchE酶活力的测定方法 | 第28-29页 |
| 3.3.6 褐飞虱体内CAT酶活力的测定方法 | 第29页 |
| 3.3.7 褐飞虱体内FE酶活力的测定方法 | 第29页 |
| 3.3.8 数据分析 | 第29页 |
| 3.4 结果与分析 | 第29-35页 |
| 3.4.1 褐飞虱体内CES酶活力的分布情况 | 第29-30页 |
| 3.4.2 褐飞虱体内POD酶活力的分布情况 | 第30-31页 |
| 3.4.3 褐飞虱体内GST酶活力的分布情况 | 第31-32页 |
| 3.4.4 褐飞虱体内SOD酶活力的分布情况 | 第32-33页 |
| 3.4.5 褐飞虱体内AchE酶活力的分布情况 | 第33-34页 |
| 3.4.6 褐飞虱体内CAT酶活力的分布情况 | 第34页 |
| 3.4.7 褐飞虱体内FE酶活力的分布情况 | 第34-35页 |
| 3.5 褐飞虱体内总酶活性的测定结果 | 第35页 |
| 3.6 讨论 | 第35-38页 |
| 3.6.1 褐飞虱取食含Cry1Ab蛋白水稻对酯酶活性的影响 | 第35-36页 |
| 3.6.2 褐飞虱取食含Cry1Ab蛋白水稻对氧化还原性酶活性的影响 | 第36页 |
| 3.6.3 取食含Bt蛋白水稻后褐飞虱体内及各部位之间的酯酶和氧化还原酶的影响 | 第36-38页 |
| 3.7 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 个人简历 | 第46页 |
