| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩写符号(Abbreviations) | 第8-12页 |
| 1 前言 | 第12-24页 |
| 1.1 干旱胁迫对植物自身造成的伤害 | 第12页 |
| 1.2 植物干旱胁迫下的生理、生化调控 | 第12-15页 |
| 1.2.1 气孔调节 | 第13页 |
| 1.2.2 渗透调节 | 第13页 |
| 1.2.3 植物的氧化防御系统 | 第13-14页 |
| 1.2.4 功能蛋白等脱水保护 | 第14-15页 |
| 1.2.5 光合作用调节 | 第15页 |
| 1.3 植物抗旱的分子机制 | 第15-19页 |
| 1.3.1 植物逆境信号传递机制 | 第15-17页 |
| 1.3.2 干旱胁迫条件下基因的表达与调控 | 第17-19页 |
| 1.4 表观遗传学 | 第19-22页 |
| 1.4.1 DNA甲基化 | 第19-20页 |
| 1.4.2 组蛋白乙酰化 | 第20-21页 |
| 1.4.3 组蛋白甲基化 | 第21-22页 |
| 1.5 干旱胁迫下植物的表观调控 | 第22页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第22-24页 |
| 2 实验材料和方法 | 第24-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-28页 |
| 2.1.1 实验材料处理 | 第24页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第24-27页 |
| 2.1.3 荧光定量PCR引物序列 | 第27-28页 |
| 2.2 试验方法 | 第28-36页 |
| 2.2.1 根长增长率的测定 | 第28页 |
| 2.2.2 地上部分、根鲜重的测定 | 第28页 |
| 2.2.3 地上部分、根干重的测定 | 第28页 |
| 2.2.4 根冠比的测定 | 第28页 |
| 2.2.5 叶片相对含水量的测定 | 第28页 |
| 2.2.6 叶片渗透介质相对电导率测定 | 第28-29页 |
| 2.2.7 RNA样品提取 | 第29-30页 |
| 2.2.8 cDNA第一链的合成 | 第30-31页 |
| 2.2.9 荧光定量PCR流程 | 第31-32页 |
| 2.2.10 免疫染色（Immunolstaining） | 第32-33页 |
| 2.2.11 蛋白印迹（Western blot） | 第33-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-50页 |
| 3.1 PEG胁迫下根长及生理生化指标的测定 | 第36-42页 |
| 3.1.1 干旱胁迫过程中根长增长率测定结果分析 | 第36-37页 |
| 3.1.2 干旱胁迫过程中根鲜重、根干重的测定结果分析 | 第37-38页 |
| 3.1.3 干旱胁迫过程中地上部分鲜重、干重的测定结果分析 | 第38-39页 |
| 3.1.4 干旱胁迫过程中根冠比测定结果分析 | 第39-40页 |
| 3.1.5 干旱胁迫过程中叶片含水量测定结果分析 | 第40-41页 |
| 3.1.6 干旱胁迫过程中电导率测定结果分析 | 第41-42页 |
| 3.2 干旱胁迫过程中干旱反应相关基因的表达模式分析 | 第42-44页 |
| 3.3 干旱胁迫过程中“百农207”和“洛旱2号”全基因组组蛋白H3K9ac修饰含量测定分析 | 第44-47页 |
| 3.3.1 免疫染色 | 第44-46页 |
| 3.3.2 蛋白印迹 | 第46-47页 |
| 3.4 干旱胁迫过程中“百农207”和“洛旱2号”组蛋白乙酰化修饰酶表达水平分析 | 第47-50页 |
| 4 讨论 | 第50-54页 |
| 4.1 干旱胁迫下不同抗性品种生理生化的改变 | 第50-51页 |
| 4.2 干旱胁迫下DREB2、LEA基因家族中Wdhn13和Wrab17基因的表达模式 | 第51页 |
| 4.3 干旱胁迫过程中不同抗性品种全基因组组蛋白H3K9ac修饰情况和组蛋白乙酰化修饰酶表达水平的分析 | 第51-52页 |
| 4.4 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
