摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第一章 文献综述 | 第10-19页 |
1.1 有机氯农药的性质及危害 | 第10-11页 |
1.2 我国土壤有机氯农药的污染现状 | 第11-12页 |
1.3 有机氯农药污染土壤主要修复技术 | 第12-14页 |
1.3.1 物理化学修复 | 第12-13页 |
1.3.2 植物修复 | 第13-14页 |
1.3.3 微生物修复 | 第14页 |
1.4 复合菌剂 | 第14-17页 |
1.4.1 复合菌剂的种类 | 第15页 |
1.4.2 复合菌剂的特点 | 第15-16页 |
1.4.3 复合菌剂的应用 | 第16-17页 |
1.5 主要研究的科学问题、研究目标与技术路线 | 第17-19页 |
1.5.1 主要研究的科学问题 | 第17页 |
1.5.2 本研究的主要内容 | 第17-18页 |
1.5.3 技术路线 | 第18-19页 |
第二章 花生和三七种植土壤调查与采样 | 第19-28页 |
2.1 引言 | 第19页 |
2.2 材料与方法 | 第19-23页 |
2.2.1 研究区概况与采样 | 第19-20页 |
2.2.2 土壤中有机氯农药的提取与分析 | 第20-22页 |
2.2.3 质量控制 | 第22-23页 |
2.2.4 土壤重金属最大含量及理化性质分析 | 第23页 |
2.3 结果与讨论 | 第23-26页 |
2.3.1 土壤中有机氯农药残留情况 | 第23-24页 |
2.3.2 土壤重金属含量 | 第24-26页 |
2.4 结论 | 第26-28页 |
第三章 乙草胺降解菌的分离筛选及降解特性研究 | 第28-40页 |
3.1 引言 | 第28页 |
3.2 材料与方法 | 第28-32页 |
3.2.1 材料、仪器与试剂 | 第28-29页 |
3.2.2 降解菌的分离、筛选与驯化 | 第29-30页 |
3.2.3 降解菌的分子生物学鉴定 | 第30-31页 |
3.2.4 生长曲线测定 | 第31页 |
3.2.5 降解菌对溶液中乙草胺的降解性能分析 | 第31-32页 |
3.2.6 环境因素对降解乙草胺的影响 | 第32页 |
3.3 结果与讨论 | 第32-39页 |
3.3.1 乙草胺降解菌分离筛选及鉴定 | 第32-35页 |
3.3.2 降解菌在LB培养基上的生长曲线 | 第35-36页 |
3.3.3 ZL-27 降解乙草胺的时间动态变化 | 第36-39页 |
3.4 结论 | 第39-40页 |
第四章 复合菌剂的构建及其降解效果研究 | 第40-47页 |
4.1 引言 | 第40页 |
4.2 材料与方法 | 第40-42页 |
4.2.1 共存实验 | 第40页 |
4.2.2 数据统计与分析 | 第40-41页 |
4.2.3 富集循环装置中降解 | 第41页 |
4.2.4 盆栽降解实验 | 第41-42页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第42-45页 |
4.3.1 共存实验结果 | 第42-43页 |
4.3.2 富集循环装置中的降解效果 | 第43页 |
4.3.3 盆栽实验降解效果 | 第43-45页 |
4.4 结论 | 第45-47页 |
第五章 有机氯污染土壤的微生物修复——原位实验 | 第47-57页 |
5.1 引言 | 第47-48页 |
5.2 材料与方法 | 第48-50页 |
5.2.1 实验选址及土壤背景描述 | 第48页 |
5.2.2 实验设计与样品采集 | 第48页 |
5.2.3 土壤的理化性质及PCNB含量的分析 | 第48-49页 |
5.2.4 土壤酶活性的测定 | 第49页 |
5.2.5 可培养微生物数量统计及微生物群落多样性分析 | 第49-50页 |
5.2.6 数据分析 | 第50页 |
5.3 结果与讨论 | 第50-56页 |
5.3.1 PCNB去除情况 | 第50-52页 |
5.3.2 土壤物理化学性质及三七生长情况 | 第52-53页 |
5.3.3 土壤酶活性 | 第53-54页 |
5.3.4 菌剂的添加对可培养微生物量及微生物多样性的影响 | 第54-56页 |
5.4 结论 | 第56-57页 |
第六章 总讨论与总结论 | 第57-61页 |
6.1 讨论 | 第57-59页 |
6.2 结论 | 第59-60页 |
6.3 研究特色 | 第60页 |
6.4 研究展望 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-67页 |
致谢 | 第67-68页 |
附录 | 第68-69页 |