| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-26页 |
| 1.1 多杀性巴氏杆菌的研究概况 | 第12-23页 |
| 1.1.1 多杀性巴氏杆菌的流行与危害 | 第12页 |
| 1.1.2 多杀性巴氏杆菌的生物学特性 | 第12-13页 |
| 1.1.3 多杀性巴氏杆菌的分型 | 第13-16页 |
| 1.1.4 牛巴氏杆菌病的临床症状和病理变化 | 第16-17页 |
| 1.1.5 多杀性巴氏杆菌的诊断方法 | 第17-19页 |
| 1.1.6 多杀性巴氏杆菌主要的毒力因子 | 第19-21页 |
| 1.1.7 多杀性巴氏杆菌疫苗研究进展 | 第21-23页 |
| 1.2 菌影疫苗 | 第23-24页 |
| 1.2.1 菌影疫苗的研究进展 | 第23-24页 |
| 1.2.2 菌影疫苗的形成机制 | 第24页 |
| 1.2.3 菌影疫苗的优势 | 第24页 |
| 1.3 本研究的目的与意义 | 第24-26页 |
| 第二章 材料与方法 | 第26-38页 |
| 2.1 材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 菌种、质粒及试验动物 | 第26页 |
| 2.1.2 主要实验仪器设备 | 第26页 |
| 2.1.3 主要药品及试剂 | 第26-27页 |
| 2.2 方法 | 第27-38页 |
| 2.2.1 裂解质粒p PBA1100-E的构建 | 第27-31页 |
| 2.2.2 牛多杀性巴氏杆菌菌影的制备 | 第31-33页 |
| 2.2.3 免疫动物及攻毒试验 | 第33-34页 |
| 2.2.4 小鼠血清中特异性抗体的检测 | 第34-35页 |
| 2.2.5 CD4+和CD8+ T淋巴细胞的检测 | 第35-36页 |
| 2.2.6 血清中细胞因子的检测 | 第36-37页 |
| 2.2.7 数据处理 | 第37-38页 |
| 第三章 试验结果 | 第38-50页 |
| 3.1 裂解质粒p PBA1100-E的构建 | 第38-40页 |
| 3.1.1 裂解盒CI857-PL-PR-E的扩增 | 第38页 |
| 3.1.2 裂解质粒p PBA1100-E的PCR和双酶切鉴定 | 第38-40页 |
| 3.2 细菌裂解率影响因素的筛选 | 第40页 |
| 3.3 裂解质粒的裂解水平检测 | 第40-41页 |
| 3.4 裂解效率计算结果 | 第41页 |
| 3.5 重组质粒p PBA1100-E的稳定性试验结果 | 第41-43页 |
| 3.6 菌影的扫描电镜观察结果 | 第43页 |
| 3.7 无菌检验 | 第43页 |
| 3.8 LD50的测定结果 | 第43-44页 |
| 3.9 攻毒保护性试验结果 | 第44页 |
| 3.10 攻毒后脏器荷菌数的检测结果 | 第44页 |
| 3.11 小鼠血清中特异性抗体的检测结果 | 第44-47页 |
| 3.12 小鼠脾脏淋巴细胞中CD4+和CD8+ T细胞的动态变化 | 第47-48页 |
| 3.12.1 脾脏中CD4+T细胞亚群占总淋巴细胞百分比的动态变化 | 第47页 |
| 3.12.2 脾脏中CD8+ T细胞亚群占总淋巴细胞百分比的动态变化 | 第47-48页 |
| 3.13 血清中细胞因子的检测 | 第48-50页 |
| 3.13.1 血清中 IL-4 含量的测定结果 | 第48页 |
| 3.13.2 血清中IL-4 含量的测定 | 第48-50页 |
| 第四章 讨论 | 第50-54页 |
| 4.1 裂解质粒p PBA1100-E的溶菌情况 | 第50页 |
| 4.2 诱导起始菌液浓度对细菌裂解率的影响 | 第50-51页 |
| 4.3 牛多杀性巴氏杆菌菌影刺激小鼠机体产生抗体的水平 | 第51页 |
| 4.4 小鼠脾脏淋巴细胞中CD4+和CD8+T细胞亚群的动态变化 | 第51-52页 |
| 4.5 小鼠血清中细胞因子含量的检测 | 第52页 |
| 4.6 牛多杀性巴氏杆菌菌影对小鼠的保护作用 | 第52-54页 |
| 第五章 结论 | 第54-56页 |
| 附录 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 个人简历 | 第66页 |
