| 英汉缩略语名词对照 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 第一部分 两种实验细胞的组织分离、细胞原代培养、传代纯化及来源鉴定 | 第15-28页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 第一节 大鼠牙囊分离、细胞原代培养、传代纯化及来源鉴定 | 第16-20页 |
| 1 材料与方法 | 第16-18页 |
| 1.1 主要仪器与试剂材料 | 第16页 |
| 1.2 方法 | 第16-18页 |
| 2 结果 | 第18-20页 |
| 2.1 rDFCs生长状况 | 第18-19页 |
| 2.2 rDFCs组织学来源鉴定 | 第19-20页 |
| 3 小结 | 第20页 |
| 第二节 分离大鼠股骨和腔骨骨髓、细胞原代培养、传代纯化及来其源鉴定 | 第20-25页 |
| 1 材料与方法 | 第20-23页 |
| 1.1 主要仪器与试剂材料 | 第20-21页 |
| 1.2 方法 | 第21-23页 |
| 2 结果 | 第23-25页 |
| 2.1 rBMSCs生长状况 | 第23-24页 |
| 2.2 rBMSCs组织学鉴定 | 第24-25页 |
| 3 小结 | 第25页 |
| 讨论 | 第25-28页 |
| 第二部分 rDFCs体外共培养对r BMSCs增殖活性的研究 | 第28-36页 |
| 前言 | 第28页 |
| 第一节 CCK-8检测r DFCs对r BMSCs增殖活性的影响 | 第28-31页 |
| 1 材料与方法 | 第28-30页 |
| 1.1 主要仪器与试剂材料 | 第28-29页 |
| 1.2 方法 | 第29-30页 |
| 2 结果 | 第30页 |
| 3 小结 | 第30-31页 |
| 第二节 FCM检测rDFCs对r BMSCs增殖活性的影响 | 第31-34页 |
| 1 材料与方法 | 第31-32页 |
| 1.1 主要仪器与试剂材料 | 第31页 |
| 1.2 方法 | 第31-32页 |
| 2 结果 | 第32-33页 |
| 3 小结 | 第33-34页 |
| 讨论 | 第34-36页 |
| 第三部分 rDFCs体外共培养对r BMSCs成骨分化的研究 | 第36-46页 |
| 前言 | 第36-37页 |
| 第一节 体外共培养rDFCs对r BMSCs的AKP活性的影响 | 第37-40页 |
| 1 材料与方法 | 第37-38页 |
| 1.1 主要仪器与试剂材料 | 第37页 |
| 1.2 方法 | 第37-38页 |
| 2 结果 | 第38-39页 |
| 3 小结 | 第39-40页 |
| 第二节 与rDFCs体外共培养的r BMSCs成骨基因表达的研究 | 第40-43页 |
| 1 材料与方法 | 第40-42页 |
| 1.1 主要仪器与试剂材料 | 第40页 |
| 1.2 方法 | 第40-42页 |
| 2 结果 | 第42-43页 |
| 2.1 BSP.OCN.COL-1.Runx2基因半定量PCR产物电泳图 | 第42页 |
| 2.2 BSP,OCN,COL-1,Runx2基因的RT-PCR检测结果 | 第42-43页 |
| 3 小结 | 第43页 |
| 讨论 | 第43-46页 |
| 全文总结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 文献综述 | 第53-60页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第61页 |
