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水稻白叶枯病菌广西分离株中一个致病相关基因的鉴定

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
第一章 前言第13-22页
    1.1 水稻白叶枯病及其病原菌概述第13-15页
        1.1.1 水稻白叶枯病的症状,分布及危害第13-14页
        1.1.2 水稻白叶枯病的流行特点及防治措施第14页
        1.1.3 水稻白叶枯病菌的形态特征第14-15页
    1.2. 水稻白叶枯病菌致病机理研究进展第15-18页
        1.2.1 水稻白叶枯病致病机理第15页
        1.2.2 水稻白叶枯病致病因子第15-18页
            1.2.2.1 胞外多糖第16-17页
            1.2.2.2 鞭毛第17页
            1.2.2.3 hrp基因第17-18页
            1.2.2.4 无毒基因第18页
    1.3 突变体库的构建第18-20页
        1.3.1 突变体库构建的意义第18页
        1.3.2 突变体库构建的方法第18-20页
            1.3.2.1 自发突变第18-19页
            1.3.2.2 诱变第19页
            1.3.2.3 插入突变第19-20页
        1.3.3 转座子Tn5插入突变在细菌功能基因组学研究的应用第20页
    1.4 克隆水稻白叶枯病菌致病相关基因方法第20-21页
        1.4.1 反向PCR第20页
        1.4.2 TAIL-PCR法第20-21页
        1.4.3 质粒拯救法第21页
    1.5 本研究的目的及意义第21-22页
第二章 材料与方法第22-40页
    2.1 实验材料第22-28页
        2.1.1 植物材料第22页
        2.1.2 菌株与质粒第22-24页
        2.1.3 试剂及常用溶液、培养基第24-27页
            2.1.3.1 抗生素、IPTG、X-gal配制第24-25页
            2.1.3.2 10×TBE电泳缓冲液第25页
            2.1.3.3 细菌质粒DNA提取试剂第25页
            2.1.3.4 细菌总DNA提取试剂第25-26页
            2.1.3.5 CCMB80溶液第26页
            2.1.3.6 Southern杂交溶液第26-27页
            2.1.3.7 本研究中用到的培养基第27页
        2.1.5 引物第27-28页
        2.1.6 实验仪器第28页
    2.2 实验方法第28-40页
        2.2.1 常规分子生物学操作技术第28-33页
            2.2.1.1 细菌质粒DNA提取第28-29页
            2.2.1.2 黄单胞菌Xoo总DNA的提取第29页
            2.2.1.3 细菌DNA酶切、纯化、连接、转化第29-32页
            2.2.1.4 琼脂糖凝胶电泳第32-33页
            2.2.1.5 聚合酶链式反应(PCR扩增)第33页
        2.2.2 细菌生理生化表型检测第33-34页
            2.2.2.1 细菌菌落形态检测第33-34页
            2.2.2.2 细菌游动性检测第34页
            2.2.2.3 细菌生长曲线检测第34页
        2.2.3 突变体库的构建第34-35页
            2.2.3.1 菌种的活化、培养第34页
            2.2.3.2 黄单胞菌电转感受态的制备第34-35页
            2.2.3.3 电脉冲转化第35页
            2.2.3.4 菌种的保存第35页
        2.2.4 剪叶法致病力分析第35-36页
        2.2.5 致病力降低的突变体Tn5插入位点的定位第36页
        2.2.6 生物信息学分析第36页
        2.2.7 验证突变体库中Tn5插入拷贝数第36-39页
            2.2.7.1 制备探针第36页
            2.2.7.2 核酸转移第36-37页
            2.2.7.3 紫外交联第37页
            2.2.7.4 预杂交第37-38页
            2.2.7.5 杂交第38页
            2.2.7.6 洗膜、显影第38-39页
        2.2.8 反式互补菌株的构建第39-40页
            2.2.8.1 三亲本结合第39页
            2.2.8.2 重组载体构建第39-40页
第三章 结果与分析第40-57页
    3.1 突变体库的构建第40页
    3.2 水稻白叶枯病菌K74 Tn5随机插入突变体库检验第40-44页
        3.2.1 PCR检验结果及分析第40-41页
        3.2.2 Tn5插入拷贝数检验及分析第41-44页
            3.2.2.1 提取Tn5插入突变体基因组DNA并检测其质量第42页
            3.2.2.2 酶切效果检测第42-43页
            3.2.2.3 探针标记检测第43-44页
            3.2.2.4 Southern杂交结果及分析第44页
    3.3 Tn5插入突变体表型分析第44-46页
        3.3.1 剪叶法致病力分析第45-46页
    3.4 表型明显突变体Tn5插入位点定位及生物信息学分析第46-48页
        3.4.1 质粒拯救第46-47页
        3.4.2 生物信息学分析第47-48页
    3.5 wxoC基因功能探究第48-57页
        3.5.1 wxoC基因基本信息第48-49页
        3.5.2 wxoC基因Tn5插入突变体信息第49-50页
        3.5.3 wxoC基因互补菌株的构建第50-53页
            3.5.3.1 wxoC互补片段的扩增第50-51页
            3.5.3.2 重组质粒pk18mobsacBwxoC的构建第51-52页
            3.5.3.3 重组质粒pLAFRJ wxoC的构建第52页
            3.5.3.4 三亲本结合、互补菌株的验证第52-53页
        3.5.4 互补菌株生理生化特性分析第53-57页
            3.5.4.1 致病力检测第53-54页
            3.5.4.2 菌落形态分析第54-55页
            3.5.4.3 游动性检测第55-56页
            3.5.4.4 生长曲线测定第56-57页
第四章 LPS基因簇多样性分析第57-59页
第五章 总结与讨论第59-62页
    5.1 对Tn5插入突变体库的评价及分析第59页
    5.2 对突变体库表型筛选及插入位点定位的分析第59-60页
    5.3 对Xoo K74中wxoC基因功能的分析第60-61页
    5.4 后续工作第61-62页
参考文献第62-72页
致谢第72-73页
攻读学位期间论文发表情况第73页

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